| Rickers, Anke: Identifikation molekularer Regulatoren der anti-IgM induzierten B-Zell Apoptose |
15
Alle nicht aufgeführten Chemikalien wurden von der Firma Carl Roth GmbH und Co bezogen. In der Regel wurden Chemikalien höchsten Reinheitsgrades (pro analysi) verwendet.
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Acridinorange |
Sigma |
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Acrylamid |
Biorad |
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Agarose |
Biozym |
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Ammoniumperoxodisulfat |
Sigma |
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Ampicillin |
Sigma |
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Aprotinin |
Sigma |
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alpha-Thioglycerol |
Sigma |
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Bacto-Agar |
Difco |
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Bacto-Trypton |
Difco |
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Bacto-Yeast Extract |
Difco |
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BCS (Bathocuproindisulfonsäure) |
Sigma |
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blocking reagent |
Boehringer |
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Casein |
Gibco |
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Coomassie Brilliant Blue |
Sigma |
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dNTP´s |
Boehringer |
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Ethidiumbromid (EtBr) |
Sigma |
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FCS |
Gibco |
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Hydroxyapatit |
Biomed |
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Leupeptin |
Sigma |
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Magermilchpulver |
Extra |
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Maleinsäure |
Merck |
|
Ponceau-Rot |
Sigma |
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RPMI 1640 |
Seromed |
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Tetracyclin |
Clontech |
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Triton X 100 |
Sigma |
|
Trypsin |
Promega |
|
Venimun |
Behringwerke AG |
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X-Gal (5-Bromo-4-Chlor-3-Indolyl-ß-D-Galaktosid) |
Sigma |
16
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Avidin-Alkalische Phosphatase |
Biorad |
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T4-DNA-Ligase |
Gibco BRL |
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RNasin |
Promega |
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Restriktionsenzyme |
MBI |
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T4-DNA-Polynukleotidkinase |
USB |
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Taq Polymerase |
Clontech |
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Klenow Fragment |
MBI |
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Rekombinantes SP1 |
Promega |
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Rekombinante Caspase 1 und 3 |
Rudi Bayaert, Gent, Belgien |
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Rekombinante Caspase 6 und 7 |
Pharmingen |
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z-DEVD-fmk |
Calbiochem |
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ac-YVAD-cmk |
Calbiochem |
Alle hier nicht aufgeführten Antikörper wurden von der Firma Santa Cruz bezogen.
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anti-IgM F(ab)2-Antikörper |
Dianova |
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anti-FITC microbeads |
Miltenyi |
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anti-hnRNP A1 Antikörper 4B10 |
Gideon Dreyfuss, Pennsylvania |
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anti-hnRNP K Antikörper 3C2 |
Gideon Dreyfuss, Pennsylvania |
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anti-hnRNP C1/C2 Antikörper 4F4 |
Gideon Dreyfuss, Pennsylvania |
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anti-CD5 |
Becton Dickinson |
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anti-CD10 |
Becton Dickinson |
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anti-CD19-FITC |
Becton Dickinson |
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anti-CD20 |
Becton Dickinson |
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anti-CD21-FITC |
Becton Dickinson |
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anti-CD38-FITC |
Immunotech |
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anti-CD40 |
Pharmingen |
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anti-Apo-1/FAS-PE |
Pharmingen |
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anti-IgD |
Immunotech |
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anti-IgM |
Becton Dickinson |
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Ziege anti-Maus-FITC |
Jackson Immuno Research Lab. |
17
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PCR-SelectTM cDNA Subtraction Kit |
Clontech |
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Apo AlertTM CPP32 Assay Kit |
Clontech |
|
AdvantageTM cDNA PCR KIT |
Clontech |
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cDNA-Synthese Kit |
Boehringer |
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High Prime |
Boehringer |
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lambda-Zap II cDNA-Synthese Kit |
Stratagene |
|
pGEM-T Kloning-Kit |
Promega |
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polyATract mRNA Isolation Systems |
Promega |
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TNT coupled Reticulocyte Lysate System |
Promega |
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Riboprobe System |
Promega |
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QIAquick PCR Purification Kit |
QIAGEN |
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Plasmid Mini-, Midi-, Maxi-Kit |
QIAGEN |
|
Oligotex mRNA Mini-Kit |
QIAGEN |
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QIAEXII Gel Extraction Kit |
QIAGEN |
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RNeasy Mini-, Midi-Kit |
QIAGEN |
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Subtractor Kit |
Invitrogen |
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Cycle Sequencing Kit |
ABI |
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Hybond N+ |
Amersham |
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Nitrocellulose Membran |
Schleicher und Schüll |
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Multiple tissue northern Membranen |
Clontech |
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alpha32 P-dCTP |
NEN |
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gamma_32 P-dATP |
NEN |
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35S-Methionin (1000 µCi/ml) |
Amersham |
3H-Thymidin Amersham
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BL41 |
erhalten von P. Falk, München |
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BL60 |
erhalten von P. Daniel, MDC, Berlin |
18
|
pGEM-T |
Promega |
|
pGEM-T easy |
Promega |
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Blueskript SK+/- |
Stratagene |
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pQE 16, 17, 51 |
QIAGEN |
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Il1ß in pGEM11 |
R. Bayaert, Gent, Belgien |
|
SP1 in Blueskript M13-SK+ |
J.T. Kadonaga, Berkeley, USA |
E.coli XL-1 blue
E.coli SOLR
E.coli JM 109
19
Alle Oligonukleotide sind in 5´-3´ Orientierung angegeben
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Linkeroligonukleotid 1: |
AGCTAGAATTCGGTACCGTCGACC |
|
Linkeroligonukleotid 2: |
GGTCGACCCTACCCAATTCTAGCT |
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|
hnRNPA1 PCR Oligonukleotide: |
ATCGGAGATCTAAATCTGCCACT |
|
|
GGTTCCAGATCTTCTAAGTCAGAGTCT |
|
|
|
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Oct-2 Bindungssequenz: |
GATCCTATAGAATCGCTTATGCAA |
|
|
GGTTGCATAAGCGATTCTATAGGA |
|
|
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B8 PCR Oligonukleotide: |
GCTAGAATTCGGTACCGTCG |
|
|
ATATCACTGGTGGACACGCC |
|
|
|
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B54 PCR Oligonukleotide: |
CTGGACGATACACCGATGTTC |
|
|
GCATCGCCCTGCAAATAGAC |
|
|
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SP1 Bindungssequenz: |
ATTCGATCGGGGCGGGGCGAGC |
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|
GCTCGCCCCGCCCCGATCGAAT |
|
|
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mutierte SP1 Bindungssequenz: |
ATTCGATCGG TT CGGGGCGAGC |
|
|
GCTCGCCCCG AA CCGATCGAAT |
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c-myc PCR Oligonukleotide: |
TTCGGGTAGTGGAAAACCAG |
|
|
ACTCAGCCAAGGTTGTGAGG |
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(poly dT)15-18 Oligonukleotid: |
Boehringer Mannheim |
|
T3 |
AATTAACCCTCACTAAAGGG |
|
T7 |
GTAATACGACTCACTATAGGGC |
|
SP6 |
GATTTAGGTGACACTATAG |
|
KS |
TCGAGGTCGACGGTATC |
|
SK |
CGCTCTAGAACTAGTGGATC |
20
|
LB-Medium |
10 g |
Bacto-Trypton |
|
|
5g |
Hefe-Extrakt |
|
|
5 g |
NaCl |
|
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auf 1 l |
H2O |
|
10 x PBS |
8 mM |
Na2HPO4x2H2O |
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2 mM |
NaH2PO4xH2O |
|
|
140 mM |
NaCl |
20 x SSC 3,0 M NaCl
0,3 M Tri-Natriumcitrat
|
5 x TBE |
0,5 M |
Tris-Base |
|
|
0,5 M |
Borsäure |
|
|
12,5 mM |
EDTA |
|
|
|
|
|
|
SM Puffer |
0,5% |
(w/v) NaCl |
|
|
|
20 mM |
Tris-HCl, pH 7,5 |
|
|
|
1 mM |
MgSO4 |
|
|
|
2 % (w/v) |
Gelatine |
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10 x MOPS |
0,2 M |
MOPS (3-(N-Morpholin)Propansulfonsäure) |
|
|
0,05 M |
Natriumacetat |
|
|
0,01 M |
EDTA |
|
|
pH 5,5-7,0 |
|
|
Nensorb Säulen |
DUPONT |
|
Talon Nickel spin coumns |
Clontech |
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Annexin-V/FITC |
Bender Med System |
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Silikonisierte Eppendorfgefäße |
Appligene |
|
Sephadex spin columns |
Pharmacia |
|
Western blue substrate |
Promega |
|
for Alkaline Phosphatase |
|
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