| Dan-Achim Ehninger
: Zelluläre Neogenese im adulten murinen cerebralen Cortex |
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Aus der Klinik für Neurologie
der Medizinischen Fakultät Charité
der Humboldt-Universität zu Berlin und dem Max-Delbrück-Centrum für Molekulare Medizin, Berlin-Buch
Dissertation
Zelluläre Neogenese im adulten murinen cerebralen Cortex
Zur Erlangung des akademischen Grades
Doctor medicinae (Dr. med.)
vorgelegt der Medizinischen Fakultät Charité
der Humboldt-Universität zu Berlin
von
Dan-Achim
Ehninger
aus Stuttgart Bad Cannstatt
Dekan: Prof. Dr. med. Dr. h. c. R. Felix
Gutachter:
1. PD Dr. med. Gerd Kempermann
2. Prof. Dr. med. Jürgen Winkler
3. Prof. Dr. med. Thomas Deller
Datum der Promotion:22.09.2003
Inhaltsverzeichnis
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1 Einleitung
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1.1 Zellneubildung im adulten ZNS
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1.2
Cerebraler Cortex
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1.3
Bedingungen einer reizreichen Lebensumgebung (Enriched Environment)
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1.4
Körperliche Aktivität
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1.5
Problemstellung und experimenteller Aufbau
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2
Material und Methoden
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2.1 Versuchstiere
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2.2 Versuchsaufbau und –bedingungen
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2.2.1 Allgemeine Tierhaltungsbedingungen
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2.2.2 Experimentelles Design
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2.2.3
Bedingungen einer reizreichen Lebensumwelt (ENR)
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2.2.4 Standardlaborbedingungen (CTR)
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2.2.5 Bedingungen körperlicher Aktivität (RUN)
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2.2.6
BrdU
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2.3 Gewebepräparation
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2.3.1 Narkose
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2.3.2 Perfusion
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2.3.3 Extraktion des Gehirns
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2.3.4
Postfixation, Sucrose
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2.3.5 Anfertigung von Schnittserien der Gehirne
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2.3.6 Lagerung der Hirnschnitte
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2.4 Immunhistochemie
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2.5 Quantifizierung BrdU+ Zellen
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2.6 Phänotypisierung BrdU+ Zellen
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2.6.1 Quantitative Phänotypisierung
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2.6.2 Qualitative Phänotypisierung
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2.7 Statistik
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2.8 Methodenkritik
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2.8.1 Präparations- und Abgrenzungsprobleme
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2.8.2
BrdU als Proliferationsmarker
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2.8.3 Phänotypisierung
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3
Ergebnisse
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3.1 Räumliche Verteilung BrdU-inkorporierender Zellen im cerebralen Cortex (Experiment 1)
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3.1.1 Unterschiedliche Dichte BrdU-positiver Zellen in Abhängigkeit von der kortikalen Schicht
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3.1.2 Die Dichte BrdU-positiver Zellen variierte nur geringfügig in Abhängigkeit von der kortikalen Region
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3.1.2.1 Dichte BrdU+ Zellen in Abhängigkeit von der kortikalen Region 1 Tag nach BrdU
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3.1.2.2 Dichte BrdU+ Zellen in Abhängigkeit von der kortikalen Region 4 Wochen nach BrdU
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3.1.2.3
Veränderung der Dichte BrdU+ Zellen zwischen 1 Tag nach BrdU und 4 Wochen nach BrdU
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3.1.2.4
Zusammenfassung
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3.2 Einfluß von körperlicher Aktivität (RUN) und reizreicher Umwelt (ENR) auf BrdU inkorporierende kortikale Zellen
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3.2.1 Beinflußt körperliche Aktivität BrdU-inkorporierende kortikale Zellen?
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3.2.1.1 Abhängigkeit der Anzahl und Dichte kortikaler BrdU+ Zellen 1 Tag nach BrdU von körperlicher Aktivität
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3.2.1.2 Abhängigkeit der Anzahl und Dichte kortikaler BrdU+ Zellen 4 Wochen nach BrdU von körperlicher Aktivität
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3.2.1.3 Die Anzahl der BrdU+ Zellen im Gyrus dentatus hippocampi unter körperlicher Aktivität 1 Tag nach BrdU bzw. 4 Wochen nach BrdU
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3.2.1.4 Zusammenfassung
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3.2.2
Beeinflußt eine reizreiche Umwelt (ENR) BrdU-inkorporierende kortikale Zellen?
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3.2.2.1 Die Anzahl und Dichte kortikaler BrdU+ Zellen unter ENR 1 Tag nach BrdU
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3.2.2.2 Die Anzahl und Dichte kortikaler BrdU+ Zellen unter ENR 4 Wochen nach BrdU
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3.2.2.3 Anzahl BrdU+ Zellen im Gyrus dentatus hippocampi unter ENR 1 Tag p.i bzw. 4 Wochen nach BrdU
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3.2.2.4
Zusammenfassung
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3.3 Zusammenfassung der Ergebnisse
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3.3.1 Welche Zellen werden im adulten murinen cerebralen Cortex neu gebildet?
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3.3.2 Beeinflußt körperliche Aktivität (RUN) kortikale zelluläre Neogenese?
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3.3.3 Beeinflußt das Leben in einer reizreichen Umwelt (ENR) kortikale zelluläre Neogenese?
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4
Diskussion
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4.1 Adult kortikal proliferierende Zellen
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4.1.1 Adulte kortikale Gliogenese
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4.1.2 Adulte kortikale Neurogenese
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4.2 Veränderungen kortikaler Zellneubildung unter freiwilliger körperlicher Aktivität
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4.3 Veränderungen kortikaler Zellneubildung unter den Bedingungen reizreicher Lebensumgebung
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5
Zusammenfassung
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Abkürzungsverzeichnis
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Literaturverzeichnis
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Danksagung
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Erklärung an Eides Statt
Tabellen
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Tab. 1: Anzahl BrdU+ Zellen in der GZ und SGZ des eines Hippokampus 1 Tag nach der (letzten) BrdU-Injektion.
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Tab. 2: Anzahl BrdU+ Zellen in der GZ und SGZ eines Hippokampus 28 Tage nach der (letzten) BrdU-Injektion.
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Tab. 3: Quantitative Phänotypisierung BrdU+ Zellen im cingulären, motorischen und visuellen Cortex, jeweils Schicht I, 1 Tag und 4 Wochen nach BrdU bei CTR-Tieren.
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Tab. 4: Quantitative Phänotypisierung BrdU+ Zellen in Schicht II/III des visuellen Cortex 1 Tag und 4 Wochen nach BrdU bei CTR-Tieren.
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Tab. 5: Veränderung der Anzahl und Dichte BrdU+ Zellen über 4 Wochen bezogen auf den 1 Tag nach BrdU Wert (in %) bei CTR-Tieren.
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Tab. 6: Anzahl BrdU+ Zellen in verschiedenen Bereichen des cerebralen Cortex 1 Tag nach BrdU. Vergleich von RUN und CTR.
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Tab. 7: Quantitative Phänotypisierung BrdU+ Zellen im cingulärer Cortex I, 1 Tag nach BrdU. Vergleich von RUN und CTR.
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Tab. 8: Quantitative Phänotypisierung BrdU+ Zellen im motorischen Cortex I, 1 Tag nach BrdU. Vergleich von RUN und CTR.
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Tab. 9: Quantitative Phänotypisierung BrdU+ Zellen im visuellen Cortex I, 1 Tag nach BrdU. Vergleich von RUN und CTR.
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Tab. 10: Quantitative Phänotypisierung BrdU+ Zellen im visuellen Cortex II/III, 1 Tag nach BrdU. Vergleich von RUN und CTR.
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Tab. 11: Anzahl BrdU+ Zellen in verschiedenen Bereichen des cerebralen Cortex 4 Wochen nach BrdU. Vergleich von RUN und CTR.
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Tab. 12: Quantitative Phänotypisierung BrdU+ Zellen im cingulären Cortex I, 4 Wochen nach BrdU. Vergleich von RUN und CTR.
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Tab. 13: Quantitative Phänotypisierung BrdU+ Zellen im motorischen Cortex I, 4 Wochen nach BrdU. Vergleich von RUN und CTR.
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Tab. 14: Quantitative Phänotypisierung BrdU+ Zellen im visuellen Cortex I, 4 Wochen nach BrdU. Vergleich von RUN und CTR.
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Tab. 15: Quantitative Phänotypisierung BrdU+ Zellen im visuellen Cortex II/III, 4 Wochen nach BrdU. Vergleich von RUN und CTR.
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Tab. 16: Anzahl BrdU+ Zellen 1 Tag und 4 Wochen nach BrdU. In der GZ/SGZ des Gyrus dentatus hippocampi. Vergleich von RUN und CTR.
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Tab. 17: Anzahl BrdU+ Zellen in verschiedenen Bereichen des cerebralen Cortex 1 Tag nach BrdU. Vergleich von ENR und CTR.
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Tab. 18: Quantitative Phänotypisierung BrdU+ Zellen im cingulären Cortex I, 1 Tag nach BrdU. Vergleich von ENR und CTR.
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Tab. 19: Quantitative Phänotypisierung BrdU+ Zellen im visuellen Cortex I, 1 Tag nach BrdU. Vergleich von ENR und CTR.
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Tab. 20: Quantitative Phänotypisierung BrdU+ Zellen im visuellen Cortex II/III, 1 Tag nach BrdU. Vergleich von ENR und CTR.
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Tab. 21: Anzahl BrdU+ Zellen in verschiedenen Bereichen des cerebralen Cortex 4 Wochen nach BrdU. Vergleich von ENR und CTR.
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Tab. 22: Quantitative Phänotypisierung BrdU+ Zellen im cingulären Cortex I, 4 Wochen nach BrdU. Vergleich von ENR und CTR.
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Tab. 23: Quantitative Phänotypisierung BrdU+ Zellen im motorischen Cortex I, 4 Wochen nach BrdU. Vergleich von ENR und CTR.
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Tab. 24: Quantitative Phänotypisierung BrdU+ Zellen im visuellen Cortex I, 4 Wochen nach BrdU. Vergleich von ENR und CTR.
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Tab. 25: Quantitative Phänotypisierung BrdU+ Zellen im visuellen Cortex II/III, 4 Wochen nach BrdU. Vergleich von ENR und CTR.
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Tab. 26: Anzahl BrdU+ Zellen 1 Tag und 4 Wochen nach BrdU. In der GZ/SGZ des Gyrus dentatus hippocampi. Vergleich von ENR und CTR.
Bilder
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Abb. 1: Bedingungen einer reizreichen Lebensumgebung (Enriched Environment, ENR)
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Abb. 2: Bedingungen einer reizreichen Lebensumgebung (Enriched Environment, ENR)
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Abb. 3: Standardlaborbedingungen (Kontrollbedingungen, CTR)
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Abb. 4: Bedingungen körperlicher Aktivität (RUN)
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Abb. 5: Koronarer Schnitt durch das Gehirn einer C57/BL6-Maus. Türkis umrandet: Frontaler Cortex (Schicht I und Schichten II-VI).
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Abb. 6:Koronarer Schnitt durch das Gehirn einer C57/BL6-Maus. Gelb: cingulärer Cortex (Schicht I, Schichten II-VI), rot: motorischer Cortex (Schicht I und Schichten II-VI), schwarz: somatosensorischer Cortex (Schicht I, Schichten II/III, Schicht IV, Schichten V+VI), violett: insulärer Cortex (Schicht I, Schichten II-VI).
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Abb. 7: Koronarer Schnitt durch das Gehirn einer C57/BL6-Maus. Grün umrandet: Visueller Cortex (Schicht I und Schichten II/III, Schicht IV, Schichten V+VI).
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Abb. 8: Phänotypisierung BrdU+ Zellen mittels konfokaler Mikroskopie. A-E: Immunreaktivität gegen Iba1 (blau) und BrdU (rot). A,B: optischer Schnitt durch Iba1+/BrdU+ Zellen. C,D: Schnittserien durch Iba1+/BrdU+ Zellen zeigen, dass sich die BrdU-immunreaktive Struktur in allen Ebenen innerhalb der Iba1-immunreaktiven befindet. E: Die Messung der Signalintensitäten entlang des Linie in D objektiviert die Kolokalisation der BrdU- und Iba1-Immunreaktivität. F: Immunreaktivität gegen Iba1 (grün) und BrdU (rot), Kernfärbung mit TO-PRO3 (blau). Man erkennt die nukleäre Lokalisation der BrdU-Immunreaktivität. G: Immunreaktivität gegen S100ß (blau), NeuN (grün) und BrdU (rot). Der optische Schnitt zeigt eine S100ß+/BrdU+ Zelle in perineuraler Lokalisation. H: Immunreaktivität gegen CNP (blau) und BrdU (rot). Die BrdU-Immunreaktivität (nukleär) ist von der gegen CNP (zytoplasmatisch) umgeben.
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| DiML DTD Version 3.0 | Zertifizierter Dokumentenserver der Humboldt-Universität zu Berlin | HTML-Version erstellt am: 11.02.2005 |