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				10 Anhang</cms:entry><cms:entry id="N1426F" part="N1426D" ref="N1426F" type="head"/><cms:entry id="_Anhang" part="N1426D" ref="_Anhang" type="link"/><cms:entry id="N14274" part="N1426D" ref="N14274" type="pagenumber">87</cms:entry><cms:entry id="N14279" part="N1426D" ref="N14279" type="part">10.1 Abkürzungen und Molekulargewichte für Aminosäuren</cms:entry><cms:entry id="N14280" part="N1426D" ref="N14280" type="table"/><cms:entry id="_Ref49172222" part="N1426D" ref="_Ref49172222" type="link"/><cms:entry id="N1461D" part="N1461D" ref="N1461D" type="declaration">
				11 Erklärung an Eides statt </cms:entry><cms:entry id="N14621" part="N1461D" ref="N14621" type="pagenumber">88</cms:entry><cms:entry id="_PictureBullets" part="N1461D" ref="_PictureBullets" type="link"/><cms:entry id="N14637" part="N1461D" ref="N14637" type="mm"/><cms:entry part="chapter6" type=":current"/><cms:entry type=":lang">de</cms:entry><cms:entry id=":contents" part="front" ref=":contents" type=":contents">Inhaltsverzeichnis</cms:entry><cms:entry type=":help"><url href="http://...">Hilfe</url></cms:entry></cms:meta><cms:content><chapter id="chapter6" label="6">
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			<section id="N127BC" label="6.1">
				<head>Der DO11.10 T-Zellrezeptor erkennt auch verkürzte OVA-Varianten</head>
				<p>In der vorliegenden Arbeit wurde die extrathymische, antigenspezifische Toleranzinduktion mittels Injektion von alterierten, stabilisierten Peptidepitopen untersucht. In einer Verkürzungsanalyse wurde zunächst die OVA<sub>323-339</sub> Sequenz auf ein Minimum an Aminosäuren (AS) verkürzt und die Wirkung auf DO11.10-T-Zellen untersucht, welche den transgenen, spezifischen T-Zellrezeptor (TZR) für OVA <sub>323-339</sub> tragen und dieses Peptid im I-A<sup>d</sup>-Kontext erkennen. <br/>Die antigene Potenz der entstandenen Peptide wurde dabei in Form von Proliferation der DO11.10 Zellen <em>in vitro</em> gemessen. In der Verkürzungsanalyse konnte OVA<sub>323-339</sub>, ein 17 AS langes Peptid, auf OVA <sub>327-337</sub>, ein 11 AS langes Peptid, verkürzt werden.<br/>Gemessen an der stimulatorischen Potenz des Ausgangspeptides OVA <sub>323-339</sub>, erreichte das Peptid OVA <sub>327-337</sub> die halbmaximale Proliferation bei einer ca. 20fach höheren Peptidkonzentration. Die Verkürzung auf 9 AS (OVA <sub>328-336</sub>) ging mit einem beträchtlichen Verlust an stimulatorischer Potenz einher (ca. 150fach, siehe auch <link ref="_Ref48807642">Tabelle 5.4</link>). Vermutlich wurden hier für die Erkennung durch und die Aktivierung von DO11.10 Zellen wichtige AS entfernt. Entsprechend den Ergebnissen aus den Verkürzungsanalysen fehlt diesem Peptid das Valin in der Position 327 des OVAlbumins. Offensichtlich handelt es sich hier um eine so genannte Ankerposition des Peptides im Peptid/I-A<sup>d</sup>-Komplex. Zu ähnlichen Ergebnissen kamen auch Scott (1998, [<link ref="_bib313">115</link>]) bei der Analyse der OVA/I-A<sup>d</sup> Bindung. Hier liegt das Valin der Position 327 in der I-A<sup>d</sup>-Tasche Nummer 4 und scheint somit dem Peptid/I-A<sup>d </sup>&#8211;Komplex eine besondere Stabilität zu verleihen. Beeson et al. konnten 1999 [<link ref="_bib18">116</link>] zeigen, dass die Position 327 sogar wahlweise in der Tasche 1 oder 4 des Peptid/I-A<sup>d </sup>&#8211;Komplexes liegen konnte, was diese Position im Sinne des Wortes, doppelt wichtig für die Antigenpräsentation macht. Die hier durchgeführten Substitutionsanalysen zeigten im Widerspruch dazu, dass es offensichtlich unerheblich war, welche Aminosäure in dieser Position stand. In die Position 327 konnte hier jede D-Aminosäure ohne Stimulationsrückgang substituiert werden. Dies zeigt, dass offensichtlich diese Position zwar besetzt sein muss, die Peptid/ I-A<sup>d </sup>Bindung aber auch von der Nachbarschaft (weitere Aminosäuresequenz, z.B. Besetzung der weiteren Taschen) abhängt. Bei näherer Betrachtung der zweiten Substitutionsanalyse fiel dann auf, dass, sobald die Position 327 durch ein rechtsdrehendes Tyrosin (<strong>y</strong>) besetzt war, keine weiteren Substitutionen (außer Glycin) in der Position 330 erlaubt waren. In der ersten Substitutionsanalyse waren noch ca. 9 weitere Substitutionen in der Position 330 akzeptiert worden. Beeson zeigte, dass, wenn die Position 327 in der ersten Peptid/ I-A<sup>d </sup>&#8211;Tasche <pagenumber id="N12806" label="65" numbering="arabic" start="65"/>lag, die Position 330 in der vierten Tasche liegen musste. Diese Beobachtung erklärt vermutlich die oben beschriebenen Ergebnisse aus der zweiten Substitutionsanalyse. <br/>Entsprechend der Verkürzungsanalysen (siehe <link ref="_Ref48744028">Tabelle 5.1</link>) zeigten sich dann neben der Position 327 auch die Positionen 328 sowie 336 und 337 als wichtige Positionen. Diese hier gemachte Beobachtung entspricht exakt den Ergebnissen von Evavold et al. (2000, [<link ref="_bib168">117</link>]). Weiterhin kamen die beiden oben genanten Autoren auch zu dem Schluss, dass ein und dasselbe Peptid verschieden im I-A<sup>d</sup>-Kontext präsentiert werden kann. Evavold konnte durch die Verwendung von DO11.10 RAG-defizienten (RAG<sup>-/-</sup>) Mäusen zusätzlich beweisen, dass die gesehene Proliferation von DO11.10-Zellen nicht durch die endogene Rekombination einer oder beider T-Zell-Rezeptorketten verursacht wurde. Das ist für die hier präsentierte Arbeit insofern bedeutsam, als dass die hier eingesetzten DO11.10 Mäuse der Rekombination eigener T-Zellrezeptoren fähig waren (RAG <sup>+/+</sup>).</p>
			</section>
			<section id="N1281F" label="6.2">
				<head>D-Aminosäuren-substituierte Peptide werden vom DO11.10 T-Zellrezeptor erkannt</head>
				<p>Basierend auf dem 11mer OVA <sub>327-337</sub> wurden dessen AS durch rechtsdrehende Aminosäuren (D-AS) ausgetauscht. In diesen Substitutionsanalysen wurde jede einzelne Position in OVA <sub>327-337</sub> durch jede mögliche rechtsdrehende Aminosäure ersetzt und die jeweils entstandenen Peptide DO11.10 Zellen als Stimulans angeboten. Es zeigte sich, dass der Einbau von D-AS durch den T-Zellrezeptor je nach Position und substituierter Aminosäure toleriert wurde und dass DO11.10 Zellen mit den einzelnen Peptidvarianten zur Proliferation und IL-2 Sekretion angeregt werden konnten. Das Peptid OVA<sub>(327-338)327y,338a</sub>.(yHAAHAEINEAa) erwies sich letztlich als besonders starker Agonist am DO11.10 T-Zellrezeptor mit einer dem OVA<sub>323-339</sub> vergleichbaren stimulatorischen Potenz.<em> In vitro</em> zeigten die aktivierten T-Zellen ein Th1-typisches Zytokinsekretionsmuster mit hoher IL-2 und INF &#947; Produktion. Dagegen produzierten diese Zellen nur wenig IL-4. <br/>Bei den hier durchgeführten Substitutionsanalysen ist bemerkenswert, dass offensichtlich erneut einige der Positionen von besonderer Bedeutung für die Erkennung durch den DO11.10 T-Zellrezeptor sind. So zeigte der Austausch der Aminosäuren in den Positionen 331, 333 und 335 durch Glycin (kein Stereoisomer möglich) nur in diesen Positionen einen deutlichen Rückgang der Proliferation von DO11.10 Zellen. Diese simpelste aller Aminosäuren konnte ansonsten in alle anderen Positionen ohne Stimulationsrückgang eingesetzt werde. Da es hier aber primär um das Einbringen von rechtsdrehenden Aminosäuren ging, wurde diese Begebenheit nicht weiter untersucht. Eine sehr ähnliche Beobachtung machten allerdings Evavold et al. (2000 [<link ref="_bib168">117</link>]), als sie in jede einzelne Position von OVA<sub>323-339</sub> ein Alanin (bzw. Serin) einsetzten. Peptide, welche <pagenumber id="N1283E" label="66" numbering="arabic" start="66"/>in den Positionen 331, 333 und 335 ein Alanin substituiert bekommen hatten, zeigten einen deutlichen Proliferationsrückgang, wenn DO11.10 Zellen mit diesen inkubiert wurden. Evavold schloss daraus, dass diese Positionen (zumindest Position 333 und 335) wichtig für die Erkennung durch den T-Zellrezeptor sind, da sie, entsprechend der cristallographischen Untersuchungen über den OVA/I-A<sup>d</sup>-Komplex, außerhalb einer I-A<sup>d</sup>-Tasche liegen und somit nicht maßgeblich für die OVA/I-A<sup>d</sup>-Bindung von Bedeutung sind. Die Beobachtung, dass sich OT-II Zellen (weiterer OVA<sub>323-339</sub> spezifischer Klon) bezüglich der oben geschilderten Substitutionsanalysen ähnlich verhielt, unterstützt diese Hypothese. <br/>Anhand der erhobenen Proliferation schloss Evavold, dass unter den drei genannten Positionen die Position 333 am wichtigsten ist, und der durch DO11.10 Zellen erkannte Peptidteil an dieser Position beginnt, da in der Position 331 wesentlich mehr Substitution von DO11.10 Zellen akzeptiert wurden. Diese Daten konnten wir hier ebenfalls bestätigen, mit dem Unterschied, dass hier D-Aminosäuren substituiert wurden (Auswertung nicht gezeigt). <br/>Zusammenfassend wurden in der vorliegenden Arbeit über 1000 verschieden Peptide mit DO11.10 T-Zellen inkubiert, wobei ausschließlich nach agonistisch wirkenden Epitopen gesucht wurde. Im Überblick der durchgeführten Verkürzungsanalysen sowie Substitutionsanalysen konnte eine Vielzahl von Epitopen bestimmt werden, welche eine agonistische Wirkung am DO11.10 T-Zellrezeptor entfalteten. In den gezeigten Analysen lässt sich die volle Bandbreite von schwacher bis starker Stimulation beobachten, wenn, wie hier geschehen, Proliferation (ggf. auch IL-2 Produktion) als Maßstab gewählt werden. Diese Beobachtung bestätigt und erweitert Beschreibungen von Evavold (1991-1995, [<link ref="_bib58">111</link>, <link ref="_bib57">112</link>, <link ref="_bib56">118</link>, <link ref="_bib59">119</link>]) und Wucherpfennig (1995, [<link ref="_bib346">120</link>]), welche belegen, dass eine Diversität an Peptiden durch ein und denselbenT-Zellrezeptor erkannt werden. Entsprechend der &#8222;molecular mimikry&#8220;-Hypothese (Alvord et al. 1985 [<link ref="_bib84">79</link>] , Oldstone et al. 1985 [<link ref="_bib69">80</link>])<sup/>kann diese Diversität auch im Rahmen von autoimmunen Erkrankungen eine Rolle spielen. Weiterhin wurde in der Vergangenheit gezeigt, dass je nach Ligand auch ein Antagonismus sowie ein so genannter partieller Agonismus am betreffenden T-Zellrezeptor möglich ist (Evavold siehe oben, Übersicht in Kersh 1996 [<link ref="_bib114">121</link>]). Es muss davon ausgegangen werden, dass unter den hier gescreenten Peptiden und D-Peptiden auch Antagonisten und partielle Agonisten waren. Der Einsatz solcher Peptide in der Toleranzinduktion bei autoimmunen Erkrankungen erscheint deshalb ebenso interessant wie der Einsatz des originalen (natürlichen) Antigens. Es ist denkbar, dass die Blockierung des T-Zellrezeptor autoreaktiver T-Zellen durch Antagonisten zumindest einen kurzfristigen Rückgang der Krankheitsaktivität bei bestehender autoimmuner Erkrankung herbeiführen könnte. In weiteren Arbeiten könnten Vor- bzw. Nachteile dieser Peptide <em>in vitro</em> wie <em>in vivo</em> geklärt werden, wobei Experimente in Mäusen <pagenumber id="N1287A" label="67" numbering="arabic" start="67"/>bezüglich der experimentellen Multiplen Sklerose (MS) bereits Erfolge zeigten (Franco 1994 [<link ref="_bib67">122</link>]). Die Umsetzung dieser Art von Therapie in Patienten mit MS zeigte in einer Phase II Studie die iatrogene (therapieinduzierte) Exazerbation der Erkrankung in einigen mit Antagonisten behandelten Patienten und ist offensichtlich nicht ohne Weiteres vom Mausmodell auf den Menschen übertragbar (Bielekova 2000 [<link ref="_bib32">5</link>], Zusammenstellung in Kamradt 2001 [<link ref="_bib108">6</link>]).</p>
			</section>
			<section id="N1288C" label="6.3">
				<head>D-Aminosäuren-substituierte Peptide weisen eine deutlich verlängerte <em>in vitro</em> Serumhalbwertszeit auf</head>
				<p>Die Analyse der <em>in vitro</em> Serumhalbwertszeit mittels HPLC erbrachte für die D-Aminosäuren- substituierten Peptide eine deutlich verlängerte <em>in vitro</em> Serumhalbwertszeit. Mausserum wurde mit den verschiedenen Peptiden inkubiert. Die in bestimmten Zeitintervallen entnommenen Proben wurden auf den verbleibenden Gehalt an Peptid untersucht und mit dem Gehalt zum Zeitpunkt 0 verglichen. Die Analyse der verschiedenen Peptide erbrachte eine deutliche Verlängerung der Serumhalbwertszeit bereits nach Einbau einer einzigen rechtsdrehenden Aminosäure. So zeigte yHAAHAEINEA (OVA<sub>(327-337)327y</sub>) verglichen mit VHAAHAEINEA (OVA<sub>327-337</sub>) eine ca. 10fach verlängerte <em>in vitro</em> Serumhalbwertszeit. Offensichtlich spielt für die Serumstabilität auch die Position im Peptid eine Rolle; so zeigte VHmAHAEINEA mit einer HWZ von unter 2h eine deutlich kürzere HWZ als yHAAHAEINEA mit ca. 5,5 Stunden. Peptide mit endständig positionierten D-Aminosäuren erbrachten eine höhere Serumstabilität als Peptide mit mittig stehenden D-Aminosäuren. Aufgrund dieser Beobachtung wurde ein 12mer hergestellt, der die Schlüsselposition in 337 (A, Alanin) behielt, aber N-Terminal durch ein y (D-Thyrosin) und C-Terminal durch ein a (D-Alanin) flankiert ist (yHAAHAEINEAa = OVA<sub>(327-338)327y,338a</sub>). Dieses Peptid zeigte die längste <em>in vitro</em> Serumhalbwertszeit und die stärkste stimulatorische Potenz an DO11.10 Zellen aller getesteten Peptide. Dieses Peptid erschien uns als bester Kandidat, um dessen Wirkung mit der Wirkung der Originalpeptide OVA<sub>323-339</sub> und der verkürzten Version OVA<sub>327-337</sub> zu vergleichen. Alle drei Peptide zeigten in vitro eine vergleichbare stimulatorische Potenz an DO11.10 Zellen und führten bezüglich des Zytokinsekretionsmusters zu keinem Wechsel von Th 1 zu Th 2, unterschieden sich also hauptsächlich in ihrer Serumhalbwertszeit. Das Peptid mit der Sequenz yHAAHAEINqA (OVA<sub>(327-337)327y,336q</sub>) wurde ebenfalls aufgrund seiner Serumhalbwertszeit von ca. 12h für die <em>in vivo</em> Versuche ausgewählt, zeigt aber eine deutlich reduzierte stimulatorische Potenz an DO11.10 Zellen in den <em>in vitro</em> Versuchen und erschien uns deshalb als nur bedingt vergleichbar.<br/>Der Versuch, die <em>in vivo</em> Peptidkonzentration nach intravenöser Injektion von Peptid, durch direkte Messung der Peptidkonzentration im Serum der Mäuse zu bestimmen, gelang nicht. <pagenumber id="N128BF" label="68" numbering="arabic" start="68"/>BALB/c Mäuse bekamen eine Injektion mit 0,3mg bzw. 0,6mg Peptid (jeweils OVA<sub>327-337</sub>und OVA<sub>(327-337)327y,336q</sub>im Vergleich) in 300µl PBS i.v.. In dem nach ½ Stunde bzw. nach 4 Stunden entnommenen Serum dieser Mäuse konnte mittels HPLC kein Peptid bestimmt werden. Weiterhin wurde in folgenden Versuchen Mäusen post injectionem von 0,3mg bzw. 0,6mg Peptid i.v. die Milzen entnommen und diese nach Bercovici (1999, [<link ref="_bib30">123</link>]) als Antigen präsentierende Zellen für zuvor mit MACS sortierte DO11.10 CD4<sup>+</sup>- T-Zellen aus DO11.10-Mäusen eingesetzt. Die <em>in vivo</em> mit Peptid beladenen APC vermochten es zu keinem Entnahmezeitpunkt (0,5h, 2h, 4h u.a.), die CD4<sup>+</sup> Zellen signifikant zur Proliferation zu stimulieren (Versuche nicht gezeigt). Berovici und seine Mitarbeiter benutzen in ihren Versuchen ein anderes System mit Mäusen, welche für das Influenza-Virus Haemaglutinin-Peptid transgen waren. Die injizierte Peptiddosis war mit 0.75 mg unwesentlich höher als in dieser Arbeit. Die einfachste Erklärung für unsere Beobachtung wäre, dass die Antigen präsentierenden Zellen nicht in der Lage waren, aktivierende Signale zu geben, weil sie sich bereits im Stadium der Toleranz befanden. <br/>Aufgrund der oben angeführten Ergebnisse stützen sich die hier besprochenen Daten nur auf die <em>in vitro</em> Messung der Serumhalbwertszeit, wobei noch folgendes beachtet werden sollte: Bezüglich eines Vergleiches der eingesetzten OVA-Varianten ist zu diskutieren, dass zum Beispiel die für OVA<sub>323-339</sub> angegebene <em>in vitro</em> Serumhalbwertszeit von unter zwei Stunden eventuelle, als Antigen wirksame &#8222;Metaboliten&#8220;, nicht berücksichtigt. Diese möglicherweise ebenfalls &#8222;wirksamen&#8220; Abbauprodukte sind mit der HPLC-Methode nicht sicher zu identifizieren. Unter dem Aspekt, dass vorrangig endständige Aminosäuren als erste abgespalten werden, sind durchaus alle in den hier durchgeführten Verkürzungsanalysen gesehenen Peptide als Metaboliten möglich. Selbst das hier synthetisierte Peptid OVA<sub>327-337</sub>(OVA<sub>327-337</sub> ) könnte prinzipiell unter den Abbauprodukten von OVA<sub>323-339 </sub>sein. Aufgrund dieser Überlegung ist der Vergleich von OVA<sub>323-339</sub> zu den D-Aminosäuren-substituierten 11meren nur bedingt verwertbar. Diesbezüglich erscheint eigentlich nur der Vergleich von OVA<sub>327-337</sub> zu seinen D-Aminosäuren-substituierten Varianten ein ebenbürtiger Vergleich zu sein. Die weitere Verkürzung von OVA<sub>327-337</sub>hatte einen drastischen Potenzrückgang zur Folge, so dass die hier entstehenden Metaboliten vernachlässigt werden können. Unklar ist, ob die von Scott (1998, [<link ref="_bib313">115</link>]) sowie von Mc Farland (1999 [<link ref="_bib18">116</link>]) beschriebenen alternativen Peptid/I-A<sup>d</sup>-Bindungen hier auch eine Rolle spielen können. Bei zunehmender Entfernung von Aminosäuren aus den OVA-Peptiden werden auch die wichtigen Ankerpositionen für die Peptid/I-A<sup>d</sup>-Bindungen entfernt und dieser Komplex zunehmend instabil. Entsprechend den Ergebnissen der oben genannten Arbeiten, bietet das OVA<sub>323-339</sub>-Peptid aufgrund seiner Länge ggf. mehr alternative Bindungsmöglichkeiten als ein stark verkürztes Epitop, wobei hier nichts über die T-Zellerkennung ausgesagt werden kann.</p>
			</section>
			<section id="N12906" label="6.4">
				<head>
					<pagenumber id="N1290A" label="69" numbering="arabic" start="69"/>D-Aminosäure substituierte OVA &#8211;Varianten induzieren periphere Toleranz</head>
				<p>In zwei verschiedenen Maus-Modellen wurde in der vorliegenden Arbeit periphere Toleranz induziert. In beiden Fällen wurde Toleranz durch die intravenöse Injektion von löslichem und deaggregiertem D-Aminosäuren-substituiertem Peptid erzielt. In jedem durchgeführten Toleranzexperiment wurde eine Gruppe mitgeführt, welche kein Peptid erhielt und eine Gruppe, die das WT-Epitop OVA<sub>323-339</sub> erhielt. Der durch Injektion der verkürzten und D-Aminosäuren-substituierten Peptide erzielte Effekt konnte so mit dem &#8222;Ausgangswert&#8220; direkt verglichen werden. Zunächst wurden unmanipulierte BALB/c-Mäuse durch eine Injektion von D-Peptid i.v. behandelt, anschließend mit dem Ausgangspeptid (OVA<sub>323-339</sub>) subkutan immunisiert. Die Lymphknotenzellen dieser Mäuse wurden eine Woche später <em>in vitro</em> mit OVA<sub>323-339</sub> restimuliert. Als Anhalt für die induzierte Toleranz diente die Messung der Proliferation und IL-2 Sekretion dieser Zellen. Mäuse, deren Zellen eine mindestens 50fach schwächere Proliferation oder IL-2 Sekretion als die Zellen der unbehandelten Mäuse zeigten, wurden als tolerant eingestuft. <br/>Die folgenden Peptidepitope OVA<sub>323-339</sub>, OVA<sub>327-337</sub>, OVA<sub>(327-337)327y</sub> (yHAAHAEINEA), OVA<sub>(327-337)327y,336q</sub> (yHAAHAEINqA) und OVA<sub>(327-338)327y,338a</sub> (yHAAHAEINEAa) wurden für die <em>in vivo</em> Versuche ausgewählt. <br/>Sowohl durch die i.v. Injektion des verkürzten OVA<sub>327-337</sub> Peptidepitops, als auch durch D-Aminosäuren-substituierten OVA<sub>327-337</sub>-Varianten konnte prinzipiell periphere Toleranz induziert werden. In der Regel lag die Quote toleranter Mäuse in den mit Peptid gespritzten Gruppen zwischen 60% und 90%. Reproduzierbare Werte über 90% wurden nur in der Gruppe der mit OVA<sub>323-339</sub> gespritzten Mäuse erreicht. Die Toleranz der Mäuse, welche OVA<sub>327-337</sub> und OVA<sub>(327-338)327y,338a</sub> erhielten, erbrachte bei Injektion von 300µg Peptid/Maus nach 17 Tagen zum Teil etwas schwächere Ergebnisse. Wenn nun nur die als tolerant eingestuften Mäuse dargestellt wurden, zeigten sowohl die mit OVA<sub>323-339</sub> wie auch die mit OVA<sub>327-337</sub> und OVA<sub>(327-338)327y,338a </sub>behandelten Mäuse eine vergleichbar geringe Proliferation oder IL-2-Sekretion. Daraus ergibt sich, dass nicht die Qualität der Toleranzinduktion unterschiedlich war, sondern eher die Quantität (Quote) der Toleranzinduktionen zwischen den Peptiden differierte. <br/>Mit dem Epitop OVA<sub>(327-337)327y,336q</sub> ließ sich entsprechend der aufgestellten Toleranzkriterien durch Injektion von 300µg/Maus keine Toleranz induzieren. Die Zellen dieser Mäuse zeigten keine reduzierte Proliferation oder IL-2 Sekretion. Das Verhalten dieser Zellen entsprach damit dem Verhalten von Zellen nicht behandelter BALB/c Mäuse. <br/>Eindeutige und konstante Ergebnisse hinsichtlich einer Toleranzinduktion in der Gruppe der alterierten Peptidepitope konnte durch Injektion von OVA<sub>(327-338)327y,338a</sub> erreicht werden. Die Zellen dieser Mäuse zeigten ein tolerantes Verhalten, welches den Zellen der mit OVA<sub>323-</sub>
					<pagenumber id="N12958" label="70" numbering="arabic" start="70"/>
					<sub>339 </sub>gespritzten Mäuse am ähnlichsten war. Wenn nur die toleranten Mäuse untereinander verglichen wurden, zeigte sich insgesamt ein gleichwertiges Toleranzverhalten, wobei die &#8222;Versagerquote&#8220; in der Gruppe der OVA(327-338)327y,338a behandelten Mäuse höher war.<br/>In einem zweiten Modell nach Kearney und Jenkins (1994, [<link ref="_bib111">2</link>]) wurden transgene DO11.10 Zellen in BALB/c Mäuse transferiert (engl. adoptive-transfer) und ihr Verhalten <em>in vivo</em> studiert. Mit Hilfe des klonotypischen Antikörpers KJ 1.26., welcher den T-Zellrezeptor der DO11.10 Zellen spezifisch erkennt, konnte die Frequenz dieser Zellen zu beliebigen Zeitpunkten nach Transfer in entnommenem Blut, der Milz oder den Lymphknoten festgestellt werden. Die Zellen der entnommenen Gewebe wurden dazu mit dem Fluoreszenz gekoppelten KJ 1.26 Antikörper inkubiert und anschließend einer FACS-Analyse zugeführt. <br/>Die Mäuse wurden nach adoptivem Transfer wie die oben genannten Mäuse behandelt (Peptid-injektion und Immunisierung). Am Tag der Entnahme der Lymphknoten zur Kultivierung wurde die Frequenz der DO11.10 Zellen in der jeweiligen Gruppe festgestellt und später mit dem <em>in vitro</em> Verhalten (Proliferation und IL-2 Sekretion) bei Restimulation verglichen. <br/>Mäuse, welche PBS alleine erhielten, zeigten nach s.c. Immunisierung eine hohe Frequenz an DO11.10 Zellen (3.4 %) in ihren Lymphknoten. Die Frequenz in den mit OVA<sub>323-339</sub>, OVA<sub>327-337</sub>und OVA<sub>(327-338)327y,338a</sub>behandelten Mäusen erreichte nur etwa halb so hohe Werte (1.4 % bis 2 %). Die höchste Frequenz an DO11.10 Zellen zeigten die Lymphknoten der mit OVA<sub>(327-337)327y,336q</sub>behandelten Mäuse (im Schnitt 4.7 %). <br/>Um eine bessere Vergleichbarkeit zu erhalten, wurden die Proliferations- und IL-2- Daten durch die Frequenz der enthaltenen DO11.10 Zellen geteilt und so die Werte auf den Gehalt an DO11.10 Zellen bezogen. <br/>Es ergab sich hier folgendes Bild: </p>
				<p>
					<ol numbering="uroman">
						<li>
							<p>Lymphozyten der mit OVA<sub>323-339 und </sub>OVA<sub>327-337</sub> behandelten Mäuse zeigten im Bereich hoher restimulativer Peptiddosen die ausgeprägteste Proliferationsbereitschaft und IL-2 Sekretion, wenn deren Verhalten auf die Frequenz der anwesenden DO11.10-Zellen bezogen wurde.</p>
						</li>
						<li>
							<p>Die Lymphozyten der mit OVA<sub>(327-338)327y,338a</sub> gespritzten Mäuse lagen bezüglich der Proliferation nur knapp unter der PBS- Gruppe. Etwas deutlicher zeigte sich der Unterschied zur PBS-Gruppe in der IL-2 Sekretion.</p>
						</li>
						<li>
							<p>Die mit OVA<sub>(327-337)327y,336q</sub> behandelten Lymphozyten zeigten eine geringere Proliferationsbereitschaft und IL-2 Sekretion pro DO11.10 Zelle als die Negativkontrollen und allen mit Peptid behandelten Mäusen. </p>
						</li>
					</ol>
				</p>
				<p>
					<pagenumber id="N129A7" label="71" numbering="arabic" start="71"/>Bezüglich der Wirkung von OVA<sub>323-339</sub> und OVA<sub>327-337</sub> kann also festgestellt werden, dass der Grund, welcher zu einer vordergründigen Proliferationsabnahme sowie IL-2-Sekretionsminderung führte, letztendlich der geringere Gehalt an DO11.10 Zellen gewesen sein muss. Bezieht man hier die Frequenz der DO11.10 Zellen mit ein, liegt nahe, dass der Hauptmechanismus der Toleranzinduktion vermutlich die Deletion im Sinne eines aktivierungsinduzierten Zelltodes war. Die nicht deletierten Zellen zeigten interessanterweise eine mit der PBS-Gruppe verglichen, erhöhte Proliferationsbereitschaft, zumindest in den Bereichen hoher restimulativer Peptidkonzentrationen. Eine andere Erklärung könnte sein, dass diese Zellen prinzipiell anerg sind, durch ein hohes Antigen Angebot aber wieder in einen Effektorzustand versetzt werden können (Konzentrationsabhängige Aktivierung). In diesem Fall wäre aber im Bereich niedriger restimulativer Peptidkonzentrationen ein deutlicherer Unterschied zu den Negativkontrollen zu erwarten gewesen. Die hier beschriebenen Ergebnisse gehen nicht mit den Ergebnisse von Jenkins et al. ([<link ref="_bib160">56</link>], [<link ref="_bib111">2</link>]) konform. Jenkins beobachtete sowohl eine Reduktion der Zellzahl nach Peptid i.v. insgesamt, als auch ein vermindertes Ansprechen der Zellen auf Restimulation mit dem vorher i.v. applizierten Peptid. Auch im Bereich hoher Dosen zeigten die Zellen deutlich verminderte Proliferation und IL-2 Sekretion. Ein bemerkenswerter Unterschied im Versuchsaufbau war eine erst 7 tage später durchgeführte (s.c.-) Immunisierung der Mäuse (Tag 17 nach Peptid i.v.). Ggf. wurden durch die verlängerte Pause anerge Zellen weiter ausselektiert. Auch Falb (1996, [<link ref="_bib60">3</link>]) warteten 14 Tage nach Peptid i.v. bis zur <em>ex vivo</em> Restimulation. <br/>Betrachtet man das Verhalten der mit OVA<sub>(327-338)327y,338a</sub> gespritzten Mäuse, zeigen deren Zellen vordergründig ein tolerantes Verhalten. Bezogen auf die Frequenz der DO11.10 Zellen zeigten diese Zellen sowohl eine Reduktion an Zellfrequenz entsprechend einer Zellzahlreduzierung, als auch eine mit der PBS-Gruppe verglichen verminderte Proliferation sowie IL-2 Sekretion der noch vorhandenen Zellen, wobei die IL-2 Sekretion, auch im Vergleich zu den unsubstituierten Epitopen, etwas deutlicher eingeschränkt war als die Proliferation. <br/>Die Lymphozyten der mit OVA<sub>(327-337)327y,336q</sub> behandelten Mäuse zeigten überraschenderweise nach der Normierung auf den DO11.10 Gehalt die deutlichste Reduktion der Proliferation und IL-2 Sekretion. Dieses Verhalten war entsprechend der Ergebnisse aus den nicht adoptiven Experimenten nicht vorhersehbar gewesen, sodass das Peptid zunächst als uninteressant angesehen wurde. Die erhöhte Frequenz der Zellen impliziert, dass (wenn überhaupt) eine weniger ausgeprägte Deletion stattgefunden haben muss, und das die verbleibenden Zellen sehr deutlich in ihrer Proliferation und IL-2 Sekretion gestört waren. Die Zellen zeigten also am deutlichsten das Verhalten anerger Zellen. Diese Beobachtung ist mit den Ergebnissen von Jenkins zum Teil konform, der dasselbe Verhalten bei <em>in vivo</em> Peptid behandelten Lymphozyten beschrieb (Jenkins <pagenumber id="N129CD" label="72" numbering="arabic" start="72"/>et al. ([<link ref="_bib160">56</link>], [<link ref="_bib111">2</link>]). Eine Reduktion der Zellzahl lag hier allerdings nicht vor. Mäuse die in der vorliegenden Arbeit mit OVA<sub>(327-337)327y,336q</sub> i.v. behandelt wurden zeigten an Tag 7 nach s.c. Immunisierung die höchste Zellfrequenz an DO11.10 Zellen in den drainierenden Lymphknoten. <br/>Aus dem Verhalten der Lymphozyten der OVA<sub>327-337</sub>, OVA<sub>323-339</sub> und OVA<sub>(327-338)327y,338a</sub> gespritzten Mäuse kann geschlossen werden, dass die Injektion der genannten Peptide primär zu einer Zellzahlreduktion z.B. im Sinne eines aktivierungsinduzierten Zelltodes der DO11.10-Zellen in diesen Mäusen führte. Wang (1993, [<link ref="_bib338">124</link>]) und Critchfield (1994, [<link ref="_bib47">125</link>]) beobachteten ein ähnliches Verhalten der Zellen bei Konfrontation (bei wesentlich höheren Dosen) mit spezifischem Antigen. Diese Begebenheit wird umso deutlicher, wenn man das <em>in vivo</em> Verhalten der transferierten Zellen beobachtet, welche nach i.v. Injektion des entsprechenden Peptides zunächst in den Lymphknoten und der Milz der gespritzten Maus akkumulierten und proliferierten (Versuche nicht gezeigt, siehe auch Pape 1997, [<link ref="_bib159">102</link>]). <br/>Auffällig war weiterhin, dass die Lymphknotenzellen der mit Peptid behandelten Mäuse sowohl in den Transferexperimenten als auch in den Nicht-Transferexperimenten im Falle von Toleranz eine deutlichere Störung der IL-2 Sekretion zeigten. Die Proliferation war in der Regel weniger ausgeprägt eingeschränkt. Auch in anderen Systemen äußerte sich T-Zelltoleranz auf der Basis einer funktionellen Nichtreaktivität stärker in einer Reduzierung der IL-2-Sekretion als in einer verminderten Proliferationsfähigkeit (Müller 1989, [<link ref="_bib145">126</link>]; Jenkins 1991, [<link ref="_bib88">127</link>]; Falb 1996, [<link ref="_bib60">3</link>]). Dies könnte zum Beispiel daran liegen, dass bei hyporesponsiven Zellen die Sekretion anderer (ebenfalls proliferativ wirkender) Zytokine nicht, oder weniger eingeschränkt ist und Zellwachstum trotz reduzierter IL-2 Sekretion stattfindet. Um dies zu überprüfen, könnte zusätzlich die Sekretion anderer Zytokine gemessen werden. <br/>Bleibt die Frage, warum die Injektion von OVA<sub>(327-337)327y,336q</sub> in unbehandelte BALB/c Mäuse keinerlei Wirkung zeigte. Man vergleiche hierzu die Ergebnisse der Transferexperimente mit denen bei unbehandelten BALB/c Mäusen. Geht man nun davon aus, dass eine vergleichsweise verminderte Deletion der spezifischen Zellen stattgefunden hat, so ist die verstärkte Proliferation und IL-2 Sekretion ggf. nur Zeichen einer erhöhten Frequenz an spezifischen T-Zellen. Da in diesem System keine Aussage über den Mechanismus der induzierten Toleranz gemacht werden kann, ist es rein spekulativ anzunehmen, dass die vorhandenen Zellen trotz ihrer erhöhten Frequenz anerges Verhalten zeigten. Die Transferexperimente weisen allerdings in diese Richtung. Ferner ist nicht auszuschließen, dass eine Überlagerung durch endogene T-Zellen der BALB/c Maus stattfand. Eventuell generiert die BALB/c Maus verschiedene T-Zellklone, von denen einige Klone OVA<sub>(327-337)327y,336q</sub> andere OVA<sub>323-339</sub> erkennen. Überschneidungen in der Spezifität dieser Klone sind denkbar. Ggf. sollten diese Mäuse in <pagenumber id="N12A0F" label="73" numbering="arabic" start="73"/>einem eigenständigen Experiment anstatt mit OVA<sub>323-339</sub> mit OVA<sub>(327-337)327y,336q</sub> immunisiert bzw. restimuliert werden, um diesen Sachverhalt zu klären.</p>
			</section>
			<section id="N12A1B" label="6.5">
				<head>Stabile Toleranzinduktion trotz Dosisreduktion</head>
				<p>Um einen möglichen Vorteil der verlängerten <em>in vitro</em> Serumhalbwertszeit der D-Aminosäuren-substituierten Peptide gegenüber OVA<sub>323-339</sub> und OVA<sub>327-337</sub> zu testen, wurde die Dosis der Peptidinjektion von 300µg auf 100µg je BALB/c Maus herabgesetzt. Es hatte sich in vorhergehenden Versuchen gezeigt, dass das Unterschreiten dieser Dosis zu einem markanten Anstieg der Proliferation der mit OVA<sub>323-339</sub> injizierten (tolerisierten) BALB/c Mäuse geführt hatte (Versuche nicht gezeigt). <br/>BALB/c Mäuse wurden an Tag 0 mit 100µg der entsprechenden Peptide in PBS (bzw. PBS alleine) i.v. injiziert und an Tag 10 mit OVA<sub>323-339</sub> s.c. immunisiert. Eine Woche später wurden die drainierenden Lymphknoten dieser Mäuse entnommen und <em>in vitro</em> mit OVA<sub>323-339</sub> restimuliert. <br/>Auch hier zeigte die Mehrheit der Lymphozyten von Peptid injizierten Mäuse eine reduzierte Proliferation und eine deutlich reduzierte IL-2 Sekretion. Mäuse die OVA<sub>(327-338)327y,338a</sub> oder OVA<sub>327-337</sub>bekommen hatten, zeigten im Vergleich zu OVA<sub>323-339</sub> behandelten Mäusen eine weniger starke Reduktion der Proliferation bzw. IL-2 Sekretion. Die Quote toleranter zu nicht toleranten Mäusen, die mit OVA<sub>327-337</sub> behandelt wurden, war vergleichbar mit den OVA<sub>(327-338)327y,338a</sub> behandelten Mäusen (siehe <link ref="_Ref48809987">Tabelle 5.7</link> und <link ref="_Ref48810043">Tabelle 5.8</link>). Bei der Betrachtung der Grafiken, in denen nur die toleranten Mäuse dargestellt sind, zeigten die mit OVA<sub>(327-338)327y,338a </sub>behandelten Mäusen für die Proliferationsergebnisse eher schlechtere Daten. So benötigten diese Mäuse hier 100fach weniger Peptid um eine den OVA<sub>323-339</sub> behandelten Mäusen vergleichbar starke Proliferation zu bieten. Bezüglich der IL-2 Sekretion bestanden keine Unterschiede zwischen diesen beiden Gruppen.<br/>Die Injektion von 100µg OVA<sub>(327-337)327y,336q</sub> brachte keinen Unterschied zu den oben genannten Daten (gleiches Verhalten wie bei 300µg i.v., Versuche nicht gezeigt) <br/>Interessanterweise zeigten die Proliferationsdaten für das jeweilige Peptid zwischen 100µg und 300µg keine nennenswerten Unterschiede. Beim Vergleich der IL-2 Daten zeigte sich allerdings ein geringer Vorteil der mit 100µg gespritzten Mäuse (zumindest für die Peptide OVA<sub>323-339</sub> und OVA<sub>327-337</sub>). <br/>Anhand der oben geschilderten Daten ließ sich kein sicherer Vorteil der D-Aminosäuren-substituierten Peptide gegenüber den L-Peptiden herausarbeiten. Der Vergleich der Daten bei 100µg Peptid i.v. und 300µg Peptid i.v. erscheint die reduzierte Dosis von 100µg immer noch zu <pagenumber id="N12A67" label="74" numbering="arabic" start="74"/>hoch, um einen deutlichen Unterschied zwischen den eingesetzten Peptiden darzulegen. Ggf. sollten Experimente mit Dosierungen von 75µg oder 50µg Peptid i.v. versucht werden. </p>
			</section>
			<section id="N12A6D" label="6.6">
				<head>Die induzierte Toleranz hält mindestens bis zu 60 Tage an</head>
				<p>Im Rahmen der vorliegenden Arbeit wurde auch die Dauerhaftigkeit extrathymisch induzierter antigenspezifischer Hyporesponsivität in BALB/c Mäusen untersucht. Es sollte festgestellt werden, ob die Dauer der induzierten Toleranz von dem injizierten Peptidantigen abhängig ist, bzw. ob ein Unterschied entsprechend der verlängerten Serumhalbwertszeit einiger Epitope festzustellen ist. In Hinblick auf den Einsatz von D-Aminosäuren-substituierten Peptiden in der Therapie autoimmuner Erkrankungen, war von Interesse, wie lange die induzierte Toleranz beobachtbar ist, und ob sich hier der Vorteil von D-Aminosäuren-vermittelter Serumstabilität bemerkbar macht. <br/>BALB/c Mäuse wurden an Tag 0 mit 300µg der entsprechenden Peptide in PBS (bzw. PBS alleine) i.v. injiziert und an Tag 33 bzw. 53 mit OVA<sub>323-339</sub> s.c. immunisiert. Eine Woche später wurden die drainierenden Lymphknoten dieser Mäuse entnommen und <em>in vitro</em> mit OVA<sub>323-339</sub> restimuliert. Wie in den Tag 17 Experimenten (s.o.) wurde die Proliferation und IL-2 Sekretion gemessen. Hierbei richtete sich das Augenmerk vornehmlich auf den Vergleich von OVA<sub>323-339</sub> zu OVA<sub>(327-338)327y,338a</sub>, da beide eine vergleichbar starke stimulatorische Potenz am DO11.10 T-Zellrezeptor zeigen.<br/>Die Analysen der induzierten Toleranz zeigten innerhalb jeder Peptid-Gruppe für die Peptide OVA<sub>323-339</sub>, OVA<sub>327-337</sub>und OVA<sub>(327-338)327y,338a</sub> vergleichbar konstante Ergebnisse über die gesamte beobachtete Zeit. Im Vergleich der einzelnen Peptide untereinander zeigten OVA<sub>323-339</sub> und OVA<sub>(327-338)327y,338a</sub> einen leichten Vorteil gegenüber OVA<sub>327-337<br/>
					</sub>Die Analysen an Tag 40 und Tag 60 ergaben keine nennenswerten Unterschiede bezüglich Proliferation oder IL-2 Sekretion zwischen OVA<sub>323-339</sub> und OVA<sub>(327-338)327y,338a</sub>. <br/>Zusammenfassend zeigten die Lymphozyten der mit OVA<sub>323-339</sub> und OVA<sub>(327-338)327y,338a</sub>behandelten Mäuse eine stabile Toleranz über die gesamte hier beobachtete Zeit, wobei die Quote der &#8222;Therapieversager&#8220; mit der Zeit bei OVA<sub>323-339</sub> behandelten Mäusen eher früher zunahm. Bemerkenswerterweise nahm die Zahl der nicht toleranten Mäuse in der OVA<sub>(327-338)327y,338a</sub> behandelten Gruppe mit der Zeit eher ab. <br/>Bei Betrachtung dieser Ergebnisse wäre es interessant, das Zeitintervall zwischen der i.v. Gabe und der s.c. Immunisierung weiter zu strecken, um einen kritischen Bereich zu finden, in dem die Wirkung einer einmaligen i.v. Gabe deutlicher nachlässt. Besonders hier sollten sich Vor- oder Nachteile der eingesetzten Peptide zeigen. </p>
			</section>
			<section id="N12AB3" label="6.7">
				<head>
					<pagenumber id="N12AB7" label="75" numbering="arabic" start="75"/>Weitere Überlegungen</head>
				<p>Betrachtet man die Wirkung von OVA<sub>(327-338)327y,338a</sub> unter dem Aspekt der bisweilen deutlicheren Wirkung gegenüber OVA<sub>327-337</sub>, sowie unter dem Aspekt aktiver Metabolite des OVA<sub>323-339</sub>, so muss festgestellt werden, dass der Einsatz von OVA<sub>(327-338)327y,338a</sub>effektiver war als der von OVA<sub>323-339</sub> oder OVA<sub>327-337</sub>. Hiermit bestätigt sich zumindest für das Peptidepitop OVA<sub>(327-338)327y,338a</sub>die Hypothese des Vorteils D-Aminosäuren-substituierter Peptide gegenüber reinen L-Peptiden in der Toleranzinduktion. Bedauerlicherweise konnte der Vorteil des D-Peptides in den Dosisreduktionsversuchen nicht deutlich herausgearbeitet werden. OVA<sub>327-337</sub> und OVA<sub>(327-338)327y,338a</sub> zeigten hier vergleichbare Ergebnisse, OVA<sub>323-339</sub> schnitt etwas besser ab.<br/>Aufgrund fehlender Messmethoden für die <em>in vivo</em> Halbwertszeit des gegebenen Peptids (s.o.), kann nur vermutet werden, dass die gegebenen Peptide vergleichbar schnell metabolisiert und ausgeschieden wurden. Die <em>in vitro</em> beobachtete verlängerte Halbwertszeit der Peptide spiegelt somit eher eine reine serumabhängige Stabilität wieder. Vermutlich kommt es <em>in vivo</em> neben der Inaktivierung bzw. Verkürzung durch serumständige Proteasen und Peptidasen, evtl. schnell zu einer Ausscheidung der Peptide. In einem Experiment von Scheffold (Manuskript in Arbeit) wurden die Peptidepitope OVA<sub>323-339</sub> und OVA<sub>(327-337)327y,336q</sub> an fluoreszierende Farbstoffe (FITC) gebunden und Mäusen i.v. injiziert. Bereits beim nächsten Urinlassen verfärbte sich der Urin der Mäuse beider Gruppen deutlich sichtbar. Nicht geklärt ist bisher, ob die Mäuse den gesamten Peptid-Farbstoff Komplex ausschieden, oder ob der Farbstoff vom Peptid getrennt und dann alleine ausgeschieden wurde. Es ist durchaus möglich, dass die injizierten Peptide sofort ausgeschieden werden, der kurze Kontakt aber ausreicht, um die Mehrzahl der antigenspezifischen Zellen zu deletieren oder zu anergisieren. Im Falle einer schnellen Ausscheidung könnten ggf. wiederholte Injektionen der Peptide bessere Ergebnisse erbringen. Die Arbeit von Bercovici (1999, [<link ref="_bib30">123</link>]) weist darauf hin, dass die ständige Anwesenheit des Antigens (hier wöchentliche Injektion des Antigens über 12 Wochen) die Qualität der induzierten Toleranz beeinflusst. Bercovici berichtet über die Selektion deletionsresistenter, funktionell hyporesponsiver Zellen. Der Versuch, über eine verlängerte <em>in vivo</em> Serumhalbwertszeit der Antigene eine quasi chronische Anwesenheit des Peptids herzustellen, konnte zumindest mit den hier durchgeführten Experimenten nicht sicher erreicht oder bewiesen werden. <br/>Im Hinblick auf eine andauernde Anwesenheit von Antigen, könnten Peptide von Interesse sein, welche aufgrund ihrer chemischen Zusammensetzung (z.B. Verbindung von D-Peptid mit Fettsäure) im enterohepatischen Kreislauf (re-) zirkulieren. Da auch der Darm sowie die Leber Orte immunologischer Vorgänge sind, könnten im Falle einer Zirkulation der Peptide spezifische <pagenumber id="N12AF6" label="76" numbering="arabic" start="76"/>T-Zellen wiederholt durch eine einzige Injektion erreicht werden. <br/>Von Interesse wäre weiterhin die Induktion von T-Zelltoleranz mittels so genannten All-D-AS-Peptiden, welche komplett aus D-Aminosäuren bestehen. Diese Peptide erwiesen sich als extrem stabil gegenüber einem Abbau durch Peptidasen. Eine weitere interessante Variante wäre Toleranzinduktion durch die intraperitoneale Applikation der Peptide in inkomplettem Adjuvans. Hier könnte die Peptidstabilität und eine ggf. verlängerte intracorporale Anwesenheit ebenfalls von Vorteil sein und zu einer verstärkten und länger andauernder Toleranz führen. Einer schnellen (z.B. renalen) Ausscheidung könnte somit eine stetige Peptidfreisetzung entgegengesetzt werden.<br/>Unumstritten ist der Einsatz von D-Peptiden in der Medizin nach wie vor interessant. So bietet die immunogene Applikation von D-Peptiden (z.B. in Form einer s.c. Injektion) sehr wohl Vorteile gegenüber den L-Peptiden. Aufgrund ihrer deutlich verbesserten Stabilität eignen sich diese zur Vakzination und können die Antikörperproduktion im Vergleich zu Kontrollen steigern (Benkirane 1996, [<link ref="_bib29">7</link>]; Van Regenmortel 1998, [<link ref="_bib329">8</link>]). In diesem Sinne werden heutzutage Versuche durchgeführt um den Einsatz von D-Peptiden Medizin weiter voranzutreiben.<br/>Auch diese Arbeit erbrachte neue und interessante Fragestellungen bezüglich der Wirkung von D-Peptiden, welche in folgenden Arbeiten aufgegriffen werden und näher beleuchtet werden könnten.</p>
			</section>
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