<?xml version="1.0" encoding="ISO-8859-1"?><cms:container xmlns:cms="http://edoc.hu-berlin.de/diml/module/cms"><cms:document><cms:meta><cms:entry ref="front" type="front"/><cms:entry type="title">&#8222;Entwicklung von Mikrosatellitenmarkern für populationsgenetische Untersuchungen bei <em>Leishmania infantum</em>&#8220;</cms:entry><cms:entry type="author"> Sebastian Hertweck
			</cms:entry><cms:entry id="chapter1" part="chapter1" ref="chapter1" type="chapter">1</cms:entry><cms:entry id="N100AD" part="chapter1" ref="N100AD" type="pagenumber">1</cms:entry><cms:entry id="N100D8" part="chapter1" ref="N100D8" type="pagenumber">2</cms:entry><cms:entry id="N100DC" part="chapter1" ref="N100DC" type="mm">876#492</cms:entry><cms:entry id="N100E7" part="chapter1" ref="N100E7" type="pagenumber">3</cms:entry><cms:entry id="N10136" part="chapter1" ref="N10136" type="section">1.1</cms:entry><cms:entry id="N1013D" part="chapter1" ref="N1013D" type="pagenumber">4</cms:entry><cms:entry id="N10153" part="chapter1" ref="N10153" type="pagenumber">5</cms:entry><cms:entry id="N1015C" part="chapter1" ref="N1015C" type="pagenumber">6</cms:entry><cms:entry id="N10162" part="chapter1" ref="N10162" type="section">1.2</cms:entry><cms:entry id="N1016F" part="chapter1" ref="N1016F" type="pagenumber">7</cms:entry><cms:entry id="N10173" part="chapter1" ref="N10173" 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				Literatur</cms:entry><cms:entry id="N1243F" part="N1243B" ref="N1243F" type="pagenumber">44</cms:entry><cms:entry id="N12512" part="N1243B" ref="N12512" type="pagenumber">45</cms:entry><cms:entry id="N12600" part="N1243B" ref="N12600" type="pagenumber">46</cms:entry><cms:entry id="N126DF" part="N1243B" ref="N126DF" type="pagenumber">47</cms:entry><cms:entry id="N127A4" part="N1243B" ref="N127A4" type="pagenumber">48</cms:entry><cms:entry id="N1288F" part="N1243B" ref="N1288F" type="pagenumber">49</cms:entry><cms:entry id="N12965" part="N1243B" ref="N12965" type="pagenumber">50</cms:entry><cms:entry id="N12A3E" part="N1243B" ref="N12A3E" type="pagenumber">51</cms:entry><cms:entry id="N12B06" part="N1243B" ref="N12B06" type="pagenumber">52</cms:entry><cms:entry id="N12BED" part="N1243B" ref="N12BED" type="pagenumber">53</cms:entry><cms:entry id="N12CC1" part="N1243B" ref="N12CC1" type="pagenumber">54</cms:entry><cms:entry id="N12D32" part="N12D32" ref="N12D32" type="declaration">Erklärung an Eides statt</cms:entry><cms:entry id="N12D41" part="N12D41" ref="N12D41" type="abbreviation">Abkürzungen</cms:entry><cms:entry id="N12D48" part="N12D41" ref="N12D48" type="table"/><cms:entry part="front" type=":current"/><cms:entry type=":lang">de</cms:entry><cms:entry ref=":contents" type=":contents">Inhaltsverzeichnis</cms:entry><cms:entry type=":help"><url href="http://...">Hilfe</url></cms:entry></cms:meta><cms:content><front id="front"><school>Aus dem Institut für Mikrobiologie und Hygiene<br/>der Medizinischen Fakultät der Charité &#8211; Universitätsmedizin Berlin </school><submission>DISSERTATION</submission><title>&#8222;Entwicklung von Mikrosatellitenmarkern für populationsgenetische Untersuchungen bei <em>Leishmania infantum</em>&#8220;</title><degree>Zur Erlangung des akademischen Grades <br/>Doctor medicinae (Dr. med.)</degree><major>vorgelegt der Medizinischen Fakultät der Charité &#8211; <br/>Universitätsmedizin Berlin</major><author>von<br/>
			<given> Sebastian</given>
			<surname>Hertweck
			</surname><br/>
			<suffix>aus Karlsruhe</suffix>
		</author><dean>Prof. Dr. Joachim W. Dudenhausen,<br/>Prof. Dr. med. Martin Paul</dean><approvals>
			<name>Prof. Dr. Wolfgang Presber</name>
			<name>Prof. Dr. Heidrun Moll</name>
			<name>Prof. Dr. Christian Bogdan</name>
		</approvals><date>Datum der Promotion: 19. 7. 2004</date><abstract lang="de">
			<head>Abstract</head>
			<p>
				<em>Leishmania infantum</em> ist für einen beträchtlichen Teil der viszeralen Leishmaniosen weltweit verantwortlich. Die allgemein anerkannte Methode zu Klassifizierung wie auch zur Identifizierung von Leishmanien ist die Isoenzymanalyse. Speziell für <em>L. infantum </em>reicht das Auflösungsvermögen dieser Methodik allerdings nicht aus, da mehr als 80 % der analysierten Stämme dem prädominanten Zymodem MON-1 angehören. In dieser Arbeit wurden Primerpaare für die Amplifikation von 15 unabhängigen Mikrosatelliten entwickelt. Das verwendete Protokoll zur Erstellung einer angereicherten genetischen Bibliothek ist leicht für andere Leishmanienspezies adaptierbar. Die Marker wurden an 13 Stämmen des <em>L. donovani-</em>Komplexes getested mit Schwerpunkt auf <em>L. infantum </em>MON-1. Die berechneten Dendrogramme entsprachen weitestgehend den Ergebnissen früherer, auf genotypischen Methoden basierenden phylogenetischen Studien. In Abhängigkeit von Zymodem und Spezies wurden unterschiedlich hohe Anteile heterogener Allele beobachtet. </p>
			<p>Das ist der erste Satz von unabhängigen Mikrosatellitenmarkern entwickelt speziell für <em>L. infantum, </em>der groß genug für phylogenetische Anwendungen ist. Für jedem untersuchten Stamm wurde ein eigener Multilocus-Genotyp beobachtet, was diese Methode zu einem wichtigen Werkzeug für epidemiologische und populationsgenetische Untersuchungen macht.</p>
		</abstract><keywords lang="de">
			<keyword><em>Leishmania donovani</em>-Komplex</keyword>
			<keyword><em>Leishmania infantum</em></keyword>
			<keyword>Mikrosatellit</keyword>
			<keyword>Populationsgenetik</keyword>
		</keywords><abstract lang="en">
			<head>Abstract</head>
			<p>
				<em>Leishmania infantum </em>is responsible for a large proportion of visceral leishmaniasis all over the world. The universally accepted standard method for characterizing and identification of <em>Leishmania</em> is the isoenzyme analysis. Especially for <em>L. infantum,</em> this procedure lacks of discriminative power because the predominant zymodeme MON-1 is represented by more than 80 % of the analysed isolates. In this study, PCR assays amplifying 15 independent microsatellites were developed using a method to create highly enriched libraries that can easily be adapted for other species of <em>Leishmania</em>. The panel of markers was tested for 13 strains of the <em>L. donovani </em>complex with main emphasis on <em>L. infantum</em> MON-1. The calculated dendrograms corresponded to the results of former phylogenetic investigations based on genotypic methods. Depending of zymodeme and species, different degrees of allelic heterozygosity were observed. </p>
			<p>This is the first set of independent microsatellite markers especially developed for <em>L. infantum</em>, which is large enough for phylogenetic applications. An unique multi locus genotype is produced for each analysed isolate what makes this approach to a powerful tool for epidemiological and population genetic investigations. </p>
		</abstract><keywords lang="en">
			<keyword><em>Leishmania donovani</em> complex</keyword>
			<keyword><em>Leishmania infatum</em></keyword>
			<keyword>microsatellite</keyword>
			<keyword>population genetics</keyword>
		</keywords><freehead id=":contents">Inhaltsverzeichnis</freehead><ul><li><p><link ref="chapter1">1</link> 
				Einleitung<ul><li><p><link ref="N10136">1.1</link> Methoden zur Differenzierung von Spezies und Subspezies</p></li><li><p><link ref="N10162">1.2</link> Variable Mikrosatellitensequenzen als epidemiologische Marker </p></li><li><p><link ref="N101B1">1.3</link> Zielsetzung der vorliegenden Arbeit</p></li></ul></p></li><li><p><link ref="chapter2">2</link> .Material und Methoden<ul><li><p><link ref="N101FB">2.1</link> Präparation der DNS</p></li><li><p><link ref="N1020A">2.2</link> 
					Erstellen einer mit Mikrosatelliten angereicherten Genbibliothek<ul><li><p><link ref="N10216">2.2.1</link> Präparation des Adaptors</p></li><li><p><link ref="N1021F">2.2.2</link> Verdau und Adaptorligation</p></li><li><p><link ref="N1023D">2.2.3</link> Größenselektion der Fragmente und Probe-PCR</p></li><li><p><link ref="N10258">2.2.4</link> 
						Anreicherung von Mikrosatelliten enthaltenden Fragmenten</p></li><li><p><link ref="N1028D">2.2.5</link> PCR, Testelektrophorese und Ligation in p-Drive-Vector</p></li><li><p><link ref="N10298">2.2.6</link> 
						Präparation der Agarplatten</p></li><li><p><link ref="N102A8">2.2.7</link> Transformation in kompetente <em>E. coli</em>-Bakterien</p></li></ul></p></li><li><p><link ref="N102B8">2.3</link> 
					Screening der Kolonien nach (GT)10-positiven Klonen und Aufbereitung zur Sequenzierung</p></li><li><p><link ref="N102CE">2.4</link> 
					Design von Primern für die Amplifizierung spezifischer Mikrosatellitenmarker</p></li><li><p><link ref="N102DE">2.5</link> Optimierung der PCR-Bedinungen für die ermittelten Primerpaare </p></li><li><p><link ref="N105C7">2.6</link> Testung der Mikrosatellitenmarker auf Längenpolymorphismen </p></li><li><p><link ref="N105DD">2.7</link> 
					Geräte und Dienstleistungen</p></li></ul></p></li><li><p><link ref="chapter3">3</link> 
				Ergebnisse<ul><li><p><link ref="N106C1">3.1</link> Erstellung einer CA/GT-Mikrosatelliten-Bibliothek</p></li><li><p><link ref="N1085B">3.2</link> Sequenzauswertung und Primerdesign</p></li><li><p><link ref="N10EE4">3.3</link> Nachweis von Polymorphismen in den Mikrosatellitenregionen</p></li><li><p><link ref="N12292">3.4</link> 
					Bestimmung der genetischen Verwandtschaft basierend auf der Analyse der Mikrosatellitenvariationen</p></li></ul></p></li><li><p><link ref="chapter4">4</link> 
				Diskussion</p></li><li><p><link ref="chapter5">5</link> .Zusammenfassung</p></li><li><p><link ref="N1243B">
				Literatur</link></p></li><li><p><link ref="N12D32">Erklärung an Eides statt</link></p></li><li><p><link ref="N12D41">Abkürzungen</link></p></li></ul><freehead id=":toc-tables">Tabellen</freehead><ul><li><p><link ref="N102ED">
							Tab. 1: Stämme des L. donovani-Komplexes, die in dieser Arbeit verwendet wurden (* Speziesbezeichnungen nach MLEE (Pratlong 2001))</link></p></li><li><p><link ref="N106DB">Tab. 2: Anteil an positiven Kolonien und Redundanzen (* davon Artefakte)</link></p></li><li><p><link ref="N10871">
							Tab. 3: Mikrosatellitenprimerpaare (TA: Annealingtemperatur; unter Repeats findet sich Art und Länge der Repeats beim klonierten Stamm PM1 sowie Längenbereich bei allen untersuchten Stämmen; bei Lokalisation ist die Spezies der Vergleichssequenz angege-ben; * zu Li71-41 siehe Abb. 7)</link></p></li><li><p><link ref="N10F0E">
							Tab. 4: Polymorphe Mikrosatellitenmarker für die untersuchten Stämme des L. donovani-Komplex; dargestellt ist die Größe des jeweiligen Markers in Bp</link></p></li><li><p><link ref="N11873">
							Tab. 5: Polymorphe Mikrosatellitenmarker für die untersuchten Stämme des L. donovani-Komplexes; dargestellt ist die Anzahl der repetitiven Elemente.</link></p></li></ul><freehead id=":toc-media">Bilder</freehead><ul><li><p><link ref="N100DC">Abb. 1: Taxonomie von Leishmania</link></p></li><li><p><link ref="N10173">Abb. 2: angenommener Mutationsmechanismus bei Mikrosatelliten </link></p></li><li><p><link ref="N1022D">Abb. 3: Sau3A1-spezifischer Adaptor und seine Bestandteile</link></p></li><li><p><link ref="N1024E">Abb. 4: Ein Schmier im Bereich von 400 bis 1000 Bp spricht für erfolgreiche Adaptorligation und Größenselektion. </link></p></li><li><p><link ref="N1083F">Abb. 5: Fließschema: Anlegen der angereicherten genetischen Bibliothek</link></p></li><li><p><link ref="N10851">Abb. 6: die positive Kolonie (41-19) zeichnet sich durch deutliche Doppelbande aus</link></p></li><li><p><link ref="N10EDA">Abb. 7: Deletion und Punktmutation an Locus Li71-41</link></p></li><li><p><link ref="N10EF5">Abb. 8: Polyacrylamidgelelektrophorese (Locus 72-23, IPT1 nicht aufgetragen)</link></p></li><li><p><link ref="N10F00">Abb. 9: Gelelektrophorese mit MethaPhor-Agarose (Locus Li72-20)</link></p></li><li><p><link ref="N122D7">Abb. 10: Dendrogramme erstellt mit UPGMA nach Berechnung von Ds (Nei 1972) und Ddm (Goldstein 1995 a)</link></p></li></ul></front></cms:content></cms:document></cms:container>