<?xml version="1.0" encoding="ISO-8859-1"?><cms:container xmlns:cms="http://edoc.hu-berlin.de/diml/module/cms"><cms:document><cms:meta><cms:entry id="front" part="front" ref="front" type="front"/><cms:entry type="title">Sequentielle Genotypisierung von <em>Pseudomonas aeruginosa</em>-Isolaten und Übereinstimmung von bakteriologischen Proben aus dem oberen und unteren Respirationstrakt von Patienten mit Cystischer Fibrose</cms:entry><cms:entry type="author">Andreas  Jung</cms:entry><cms:entry id="N10040" part="front" ref="N10040" type="dedication"/><cms:entry ref="chapter1" type="chapter">1 Einleitung</cms:entry><cms:entry ref="N100D1" type="section">1.1 Stand der Forschung</cms:entry><cms:entry ref="N100D6" type="subsection">1.1.1 Cystische Fibrose: Historisches</cms:entry><cms:entry ref="N100DD" type="citenumber">1</cms:entry><cms:entry ref="N10118" type="subsection">1.1.2 Pathophysiologie der Atemwege</cms:entry><cms:entry ref="N10126" type="citenumber">2</cms:entry><cms:entry ref="N10146" type="subsection">1.1.3 Pulmonale Infektion mit P. aeruginosa
               </cms:entry><cms:entry ref="N1018D" type="subsection">1.1.4 Mikrobiologische Probengewinnung</cms:entry><cms:entry ref="N101CE" type="subsection">1.1.5 Typisierung von P. aeruginosa
               </cms:entry><cms:entry ref="N101D8" type="citenumber">3</cms:entry><cms:entry ref="N102AD" type="section">1.2 Aufgabenstellung</cms:entry><cms:entry ref="N102B4" type="citenumber">4</cms:entry><cms:entry id="chapter2" part="chapter2" ref="chapter2" type="chapter">2 Material und Methoden</cms:entry><cms:entry id="N102CB" part="chapter2" ref="N102CB" type="section">2.1 Patientenkollektiv, Ein- und Ausschlusskriterien</cms:entry><cms:entry id="N102D0" part="chapter2" ref="N102D0" type="helpercitenumber">4</cms:entry><cms:entry id="N102F1" part="chapter2" ref="N102F1" type="section">2.2 Probenentnahme</cms:entry><cms:entry id="N102F6" part="chapter2" ref="N102F6" type="subsection">2.2.1 Untersuchungszeitpunkte, Art der Proben</cms:entry><cms:entry id="N102FD" part="chapter2" ref="N102FD" type="citenumber">5</cms:entry><cms:entry id="N10308" part="chapter2" ref="N10308" type="subsection">2.2.2 Bronchiallavage</cms:entry><cms:entry id="N10315" part="chapter2" ref="N10315" type="subsection">2.2.3 Mikrobiologische Anzucht und Identifizierung</cms:entry><cms:entry id="N10323" part="chapter2" ref="N10323" type="citenumber">6</cms:entry><cms:entry id="N10329" part="chapter2" ref="N10329" type="section">2.3 Genotypisierung (Genetisches Fingerprinting)</cms:entry><cms:entry id="N1032E" part="chapter2" ref="N1032E" type="subsection">2.3.1 Phenol-Chlorophorm-Extraktion der genomischen DNA</cms:entry><cms:entry id="N1033A" part="chapter2" ref="N1033A" type="subsection">2.3.2 Random Amplified Polymorphic DNA (RAPD)-Analyse</cms:entry><cms:entry id="N1037C" part="chapter2" ref="N1037C" type="citenumber">7</cms:entry><cms:entry id="N1037F" part="chapter2" ref="N1037F" type="table"/><cms:entry id="N10690" part="chapter2" ref="N10690" type="subsection">2.3.3 DNA-Makrorestriktion und Pulsfeld-Gelelektrophorese</cms:entry><cms:entry id="N10697" part="chapter2" ref="N10697" type="citenumber">8</cms:entry><cms:entry id="N106BA" part="chapter2" ref="N106BA" type="section">2.4 Auswertung der Ergebnisse und Biometrie</cms:entry><cms:entry id="N106C1" part="chapter2" ref="N106C1" type="citenumber">9</cms:entry><cms:entry id="chapter3" part="chapter3" ref="chapter3" type="chapter">3 Ergebnisse</cms:entry><cms:entry id="N106D2" part="chapter3" ref="N106D2" type="section">3.1 Mikrobiologische Kulturen und Lungenfunktionsdaten</cms:entry><cms:entry id="N106D7" part="chapter3" ref="N106D7" type="helpercitenumber">9</cms:entry><cms:entry id="N106E2" part="chapter3" ref="N106E2" type="citenumber">10</cms:entry><cms:entry id="N106E5" part="chapter3" ref="N106E5" type="table"/><cms:entry id="N107E7" part="chapter3" ref="N107E7" type="citenumber">11</cms:entry><cms:entry id="N107EA" part="chapter3" ref="N107EA" type="table"/><cms:entry id="N1106E" part="chapter3" ref="N1106E" type="section">3.2 Vorhersagewerte der Atemwegsproben</cms:entry><cms:entry id="N11078" part="chapter3" ref="N11078" type="citenumber">12</cms:entry><cms:entry id="N1107B" part="chapter3" ref="N1107B" type="table"/><cms:entry id="N111A5" part="chapter3" ref="N111A5" type="section">3.3 Vergleich der Typisierungsmethoden</cms:entry><cms:entry id="N111BB" part="chapter3" ref="N111BB" type="citenumber">13</cms:entry><cms:entry id="N111BE" part="chapter3" ref="N111BE" type="table"/><cms:entry id="N11335" part="chapter3" ref="N11335" type="mm">605#657</cms:entry><cms:entry id="N11354" part="chapter3" ref="N11354" type="section">3.4Pseudomonas-Stämme und Subtypen</cms:entry><cms:entry id="N1135E" part="chapter3" ref="N1135E" type="citenumber">14</cms:entry><cms:entry id="N11373" part="chapter3" ref="N11373" type="citenumber">15</cms:entry><cms:entry id="N11379" part="chapter3" ref="N11379" type="table"/><cms:entry id="N11413" part="chapter3" ref="N11413" type="mm">605#667</cms:entry><cms:entry id="N1142A" part="chapter3" ref="N1142A" type="citenumber">16</cms:entry><cms:entry id="N11430" part="chapter3" ref="N11430" type="table"/><cms:entry id="N114FA" part="chapter3" ref="N114FA" type="citenumber">17</cms:entry><cms:entry id="N114FD" part="chapter3" ref="N114FD" type="mm">605#679</cms:entry><cms:entry id="chapter4" part="chapter4" ref="chapter4" type="chapter">4 Diskussion</cms:entry><cms:entry id="N11519" part="chapter4" ref="N11519" type="helpercitenumber">17</cms:entry><cms:entry id="N11522" part="chapter4" ref="N11522" type="section">4.1 Diagnostische Wertigkeit von mikrobiologischen Kulturen</cms:entry><cms:entry id="N1152F" part="chapter4" ref="N1152F" type="citenumber">18</cms:entry><cms:entry id="N11572" part="chapter4" ref="N11572" type="citenumber">19</cms:entry><cms:entry id="N11588" part="chapter4" ref="N11588" type="section">4.2 Methoden der Genotypisierung</cms:entry><cms:entry id="N1159F" part="chapter4" ref="N1159F" type="citenumber">20</cms:entry><cms:entry id="N115E5" part="chapter4" ref="N115E5" type="section">4.3 Intraindividuelle und longitudinale Variabilität der Pseudomonas-Genotypen</cms:entry><cms:entry id="N115EF" part="chapter4" ref="N115EF" type="citenumber">21</cms:entry><cms:entry id="N11638" part="chapter4" ref="N11638" type="citenumber">22</cms:entry><cms:entry id="chapter5" part="chapter5" ref="chapter5" type="chapter">5 Zusammenfassung</cms:entry><cms:entry id="N11646" part="chapter5" ref="N11646" type="helpercitenumber">22</cms:entry><cms:entry id="N11654" part="chapter5" ref="N11654" type="citenumber">23</cms:entry><cms:entry ref="N1165D" type="back"/><cms:entry id="N1165F" part="N1165F" ref="N1165F" type="abbreviation">Abkürzungsverzeichnis</cms:entry><cms:entry id="N11666" part="N1165F" ref="N11666" type="table"/><cms:entry id="N117FD" part="N117FD" ref="N117FD" type="bibliography">Literaturverzeichnis</cms:entry><cms:entry id="I_bib1" part="N117FD" ref="I_bib1" type="link"/><cms:entry id="I_bib2" part="N117FD" ref="I_bib2" type="link"/><cms:entry id="I_bib3" part="N117FD" ref="I_bib3" type="link"/><cms:entry id="I_bib4" part="N117FD" ref="I_bib4" type="link"/><cms:entry 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type="table"/><cms:entry id="N1252A" part="N1252A" ref="N1252A" type="appendix">Publikationen</cms:entry><cms:entry id="N1252C" part="N1252A" ref="N1252C" type="head"/><cms:entry id="N1252F" part="N1252A" ref="N1252F" type="p"/><cms:entry id="N12535" part="N1252A" ref="N12535" type="p"/><cms:entry id="N12541" part="N1252A" ref="N12541" type="p"/><cms:entry id="N12547" part="N1252A" ref="N12547" type="p"/><cms:entry id="N12553" part="N1252A" ref="N12553" type="p"/><cms:entry id="N12559" part="N1252A" ref="N12559" type="p"/><cms:entry id="N1256B" part="N1252A" ref="N1256B" type="p"/><cms:entry id="N12571" part="N1252A" ref="N12571" type="p"/><cms:entry id="N12596" part="N12596" ref="N12596" type="declaration">Eidesstattliche Erklärung</cms:entry><cms:entry part="chapter1" type=":current"/><cms:entry type=":lang">de</cms:entry><cms:entry id=":contents" part="front" ref=":contents" type=":contents">Inhaltsverzeichnis</cms:entry><cms:entry type=":help"><url href="http://...">Hilfe</url></cms:entry></cms:meta><cms:content><chapter id="chapter1">
         <head>1 Einleitung</head>
         <section id="N100D1">
            <head>1.1 Stand der Forschung</head>
            <subsection id="N100D6">
               <head>1.1.1 Cystische Fibrose: Historisches</head>
               <p>
                  <citenumber id="N100DD" start="1"/>
                  <em>&#8222;Woe to that child which when kissed on the forehead tastes salty.  </em>
                  <em><br/>He is bewitched and soon must die.&#8221; </em>
               </p>
               <p>Diese aus dem europäischen Raum stammende Überlieferung belegt, dass bereits seit dem frühen 17. Jahrhundert ein typisches Symptom der Mukoviszidose, nämlich der hohe Salzgehalt des Schweißes, bekannt und gefürchtet war (<link ref="I_bib1">1</link>, <link ref="I_bib2">2</link>). Dennoch sollte es bis zum Jahr 1936 dauern, dass der Schweizer Physiologe Fanconi erstmals eine klinische Beschreibung des &#8222;Coeliakiesyndroms bei angeborener zystischer Pankreasfibromatose und Bronchiektasen&#8220; dem medizinischen Kollegium präsentierte (<link ref="I_bib3">3</link>). Zwei Jahre später veröffentlichte die amerikanische Pathologin Anderson ihre Untersuchungen an verstorbenen Kindern, welche unter Destruktion des Pankreas und Infektionen mit Zerstörung des Lungengewebes litten, und gab der &#8222;zystischen Pankreasfibrose&#8220; ihren noch heute gebräuchlichen Namen (<link ref="I_bib4">4</link>). Der in Deutschland und einigen anderen europäischen Ländern daneben verwendete Name &#8222;Mukoviszidose&#8220; geht auf die Ausführungen von Farber 1945 zurück, der eine generalisierte Eindickung der Sekrete bei dem neu beschriebenen Krankheitsbild konstatierte (<link ref="I_bib5">5</link>). Das pathophysiologische Korrelat zu dieser Beobachtung lieferte 1953 Di Sant´ Agnese, als er den hohen Natriumchloridgehalt des Schweißes bei Patienten mit cystischer Fibrose (CF) beschrieb (<link ref="I_bib6">6</link>) und damit den Grundstein für den Goldstandard der CF-Diagnostik, den Schweißtest nach Gibson und Cooke (<link ref="I_bib7">7</link>), legte. Die Entdeckung des Cystic-Fibrosis-Transmembrane-Conductance-Regulator (CFTR)-Gens auf Chromosom 7 (<link ref="I_bib8">8</link>), welches für einen Chloridionenkanal codiert (<link ref="I_bib9">9</link>),  schuf schließlich 1989 die Grundlage für die heutige molekularbiologische Diagnostik der Mutationsanalyse, wobei mittlerweile über 1000 Mutationen des CFTR-Gens bekannt sind (<link ref="I_bib10">10</link>). Dass der interindividuell sehr heterogene pulmonale Verlauf der Erkrankung jedoch nicht nur vom CFTR-Genotyp, sondern wahrscheinlich auch von so genannten &#8222;modifier genes&#8220; abhängt, ist eine der wesentlichsten Erkenntnisse der aktuellen molekulargenetischen Forschung (<link ref="I_bib11">11</link>).</p>
            </subsection>
            <subsection id="N10118">
               <head>1.1.2 Pathophysiologie der Atemwege</head>
               <p>Progressive Infektion und chronische, durch Neutrophile vermittelte Inflammation der tieferen Atemwege mit fortschreitender Destruktion des Lungengewebes und konsekutiver respiratorischer Insuffizienz stellen auch heute noch die Hauptursache für die reduzierte Lebensqualität und Lebenserwartung der Mukoviszidose-Patienten dar (<link ref="I_bib12">12</link>).</p>
               <p>
                  <citenumber id="N10126" start="2"/>Die Mukoviszidose ist eine generalisierte Störung des sekretorischen Epithels aller exokrinen Drüsen. Die Mutationen im CFTR-Gen lösen den Basisdefekt des gestörten Salz- und Wassertransports aus. Fehlendes oder defektes CFTR-Protein vermindert die Chloridpermeabilität der Apikalmembran der exokrinen Epithelzelle. Am Bronchialepithel stellt die inadäquate NaCl-Sekretion und die damit verbundene erhöhte Viskosität, relative Wasserarmut und eingeschränkte mukoziliäre Clearance der Sekrete einen wesentlichen Pathomechanismus dar. Zellulärer und bakterieller Debris, insbesondere hochmolekulare DNA, sowie proteolytische enzymatische Prozesse, Antikörperproduktion und Sauerstoff-Radikalbildung sind weitere wichtige Komponenten der komplexen pathologischen Vorgänge in den Atemwegen (<link ref="I_bib13">13</link>). Die bakterielle Flora des Respirationstrakt von CF-Patienten ist charakteristisch und schließt neben <em>Staphylococcus aureus</em>, <em>Hämophilus influenzae</em> und Problemkeimen wie <em>Burkholderia cepacia</em> oder <em>Stenotrophomonas maltophilia</em> typischerweise einen zunächst nicht mukösen, später ein mucoides Exopolysaccharid (Alginat) produzierenden Phänotyp der Spezies <em>Pseudomonas aeruginosa</em> ein (<link ref="I_bib14">14</link>). Trotz einer Vielzahl experimentell gewonnener Erkenntnisse sind die genauen Ursachen, warum die Atemwege von CF-Patienten gerade für diese Bakterien so empfänglich sind, weiterhin nicht restlos geklärt, ebenso wie die Frage, ob die bereits in einer frühen Krankheitsphase nachweisbaren entzündlichen Veränderungen in erster Linie Folge von Infektionen sind oder durch das mutierte CFTR-Protein selbst hervorgerufen werden (<link ref="I_bib13">13</link>).</p>
            </subsection>
            <subsection id="N10146">
               <head>1.1.3 Pulmonale Infektion mit <em>P. aeruginosa</em>
               </head>
               <p>Das obligat aerobe, gramnegative Stäbchenbakterium <em>P. aeruginosa</em> kommt ubiquitär in der Erde und im Wasser vor. Es ist durch eine polare Begeißelung beweglich und bildet die Pigmente Pyocyanin und Fluorescein. Humanpathogene Bedeutung erhält es als opportunistischer Infektionserreger bei abwehrgeschwächten Patienten. Bei CF-Patienten gelingt es dem Bakterium durch Ausbildung und kontinuierliche Anpassung multipler Virulenzfaktoren, die Abwehrmechanismen des Wirtes zu überwinden und sich, trotz wiederholter aggressiver Antibiotikatherapie, dauerhaft in den Atemwegen zu etablieren (<link ref="I_bib22">22</link>). Wichtige Komponenten sind hierbei Biofilmbildung (<link ref="I_bib15">15</link>, <link ref="I_bib24">24</link>), genetische Hypermutabilität (<link ref="I_bib16">16</link>), multiple Antibiotikaresistenz, phänotypische Anpassungsvorgänge wie Alginat- und Pilusbildung oder Motilitätsverlust (<link ref="I_bib14">14</link>), und die Sekretion von Exoprodukten, unter anderem Elastase, alkalische Protease und Exotoxin A (<link ref="I_bib17">17</link>). Untersuchungen des bakteriellen Genotyps haben gezeigt, dass genetisch unterschiedliche <em>P. aeruginosa</em>-Stämme einen gemeinsamen Phänotyp entwickeln können, was als Ausdruck dieser Anpassungsvorgänge angesehen wird (<link ref="I_bib23">23</link>). Aber auch verschiedene Wirtsfaktoren, unter anderem die salzabhängige Inaktivierung antimikrobiell wirkender Peptide des Atemwegssekrets, der Defensine (<link ref="I_bib18">18</link>), oder die durch die CFTR-Mutation bedingte Ausbildung von <em>Pseudomonas</em>-Rezeptoren, beispielsweise auf epithelständigen Gangliosiden (<link ref="I_bib19">19</link>), erleichtern den Erregern ihre Persistenz. Als chronische Infektion wird hierbei der Nachweis von <em>P. aeruginosa</em> über mindestens 6 Monate auf der Basis von Sputumkulturen, welche in mindestens einmonatigen Abständen entnommen wurden, zusammen mit klinischen Zeichen einer Infektion oder eines histologisch erkennbaren Gewebsschadens definiert (<link ref="I_bib20">20</link>). Häufig findet man deutlich erhöhte <em>Pseudomonas</em>-Antikörpertiter im Serum (<link ref="I_bib22">22</link>).</p>
            </subsection>
            <subsection id="N1018D">
               <head>1.1.4 Mikrobiologische Probengewinnung</head>
               <p>Bereits in einer sehr frühen Krankheitsphase sind sowohl entzündliche Veränderungen als auch bakterielle Infektionen der Atemwege bei CF-Patienten nachweisbar (<link ref="I_bib21">21</link>, <link ref="I_bib25">25</link>, <link ref="I_bib26">26</link>).  Während die Prävalenz der <em>S. aureus</em>-Infektion mit dem Lebensalter abnimmt, gewinnt die Besiedlung mit <em>P. aeruginosa</em> zunehmend an Bedeutung (<link ref="I_bib22">22</link>).  Die pulmonale <em>Pseudomonas</em>-Infektion führt zu einer vermehrten Entzündung im Bereich der Atemwege und hat bereits im Kleinkindesalter einen negativen Effekt auf den Verlauf der Lungenfunktion (<link ref="I_bib27">27</link>). Hohe Spiegel an Zytokinen, neutrophilen Granulozyten und leukozytären Proteasen als Ausdruck der körpereigenen Immunabwehr sind hierbei maßgeblich an der fortschreitenden Zerstörung des Lungengewebes beteiligt (14). Ein besonderer klinischer Focus liegt deshalb in der frühzeitigen Erkennung und aggressiven antibiotischen Behandlung der pulmonalen Kolonisation mit <em>P. aeruginosa</em>, um eine chronische Infektion, und damit Inflammation der Atemwege möglichst lange zu verzögern (<link ref="I_bib22">22</link>). Zur mikrobiologischen Diagnostik werden hierzu Proben aus dem Oropharynx oder Sputumproben gewonnen. In einem frühen Stadium der Lungenerkrankung sind viele Patienten allerdings nicht in der Lage, Sputum zu expektorieren, während sputumproduzierende Patienten mit fortgeschrittener Infektion häufig nur unzureichend auf die in-vitro sensibel getesteten Antibiotika ansprechen. Mehrere Studien, welche die Erregergewinnung bei CF-Patienten mittels Bronchiallavage (BAL) mit Proben aus dem Rachenabstrich verglichen, lieferten Hinweise auf eine Überlegenheit der Bronchoskopie bezüglich der Sensitivität und der Spezifität des Erregernachweises aus den tieferen Atemwegen (<link ref="I_bib28">28</link>, <link ref="I_bib29">29</link>, <link ref="I_bib30">30</link>, <link ref="I_bib31">31</link>, <link ref="I_bib32">32</link>). Die BAL gilt daher in bezug auf die mikrobiologische Probengewinnung derzeit als Goldstandard. Auf der anderen Seite wird BAL-Sekret nur von einem oder ein paar wenigen Orten des Bronchialsystems gewonnen, so dass über die bakterielle Flora der anderen Lungenabschnitte keine Aussage gemacht werden kann (14). Die Sputumgewinnung hat hier den theoretischen Vorteil, möglicherweise mehrere unterschiedliche Kompartimente des tiefen Atemtraktes zu repräsentieren. Insgesamt gesehen ist die Datenlage, insbesondere in bezug auf die Wertigkeit von Sputumproben jedoch widersprüchlich, da die Ergebnisse vom Alter der Patienten und dem Schweregrad der Erkrankung abhängen. Darüber hinaus verwenden die meisten epidemiologischen Studien für Ihre Untersuchung Rachenabstrich- oder Sputumproben, ohne dass die Repräsentativität dieser Materialien für die bakteriologische Flora der tiefen Atemwege bisher belegt ist. </p>
            </subsection>
            <subsection id="N101CE">
               <head>1.1.5 Typisierung von <em>P. aeruginosa</em>
               </head>
               <p>
                  <citenumber id="N101D8" start="3"/>Wenn zwei oder mehrere phänotypisch identische Pseudomonaden parallel aus verschiedenen Kompartimenten des Respirationstrakts nachgewiesen werden, bedeutet dies nicht, dass es sich hierbei um genetisch identische Isolate handelt oder beide Isolate von dem selben Klon abstammen. Bis vor etwa 10 Jahren versuchte man, die bakteriellen Isolate anhand phänotypsicher Charakteristika zu differenzieren. Die diversen Methoden der Phänotypisierung beruhten in erster Linie auf der Serospezifität der Lipopolysaccharide (Serotypisierung), dem Profil der Bacteriocin-Produktion (Pyocintypisierung), der Profilanalyse der äußeren Membranproteine (outer membrane protein profil analysis) und der Empfindlichkeit auf Phagen oder Antibiotika (<link ref="I_bib33">33</link>, <link ref="I_bib34">34</link>, <link ref="I_bib35">35</link>, <link ref="I_bib36">36</link>, <link ref="I_bib37">37</link>), ließen jedoch keinen Rückschluss auf den Genotyp der Isolate zu. Um die verschiedenen Stämme und Subtypen auf molekulargenetischer Basis voneinander unterscheiden zu können, wurden in den letzten Jahren zahlreiche molekulargenetische Methoden entwickelt. Dazu gehören diverse RFLP- und PCR-basierte Typisierungen der rRNA-Genregionen (Ribotyping), des Plasmids, des Gesamtgenoms, und von spezifischen DNA-Proben wie das Exotoxin A Gen (<link ref="I_bib36">36</link>, <link ref="I_bib38">38</link>, <link ref="I_bib39">39</link>, <link ref="I_bib40">40</link>, <link ref="I_bib41">41</link>). Es zeigte sich schnell, dass in bezug auf die Typisierung von <em>P. aeruginosa</em> die genetischen Typisierungsmethoden gegenüber den herkömmlichen Phänotypisierungen sowohl im Hinblick auf Diskriminierung als auch Reproduzierbarkeit überlegen waren (<link ref="I_bib35">35</link>, <link ref="I_bib37">37</link>, <link ref="I_bib39">39</link>, <link ref="I_bib42">42</link>, <link ref="I_bib43">43</link>, <link ref="I_bib44">44</link>).</p>
               <p>Allerdings besteht bis heute kein Konsensus über eine optimale Typisierungsstrategie oder &#8211;methode (<link ref="I_bib45">45</link>). Unter den derzeit gängigen Techniken gilt die DNA-Makrorestriktions-Analyse, auch Restriktionsfragment-Längenpolymorphismus (RFLP) genannt, als eine der sensitivsten, spezifischsten und zuverlässigsten Methoden, um klonale Verwandtschaftsverhältnisse zu determinieren (<link ref="I_bib23">23</link>, <link ref="I_bib35">35</link>, <link ref="I_bib46">46</link>, <link ref="I_bib47">47</link>, <link ref="I_bib48">48</link>, <link ref="I_bib49">49</link>, <link ref="I_bib50">50</link>). Für die Genotypisierung von <em>P. aeruginosa</em>-Isolaten von CF-Patienten stellt die Aufspaltung der genomischen DNA unter Verwendung der Restriktions-Endonukleasen <em>Spe I, Dra I oder Xba I</em> mit anschließender Auftrennung der Restriktionsfragmente mittels Pulsfeld-Gelelektrophorese (PFGE) eine der anerkannten Methoden dar (<link ref="I_bib29">29</link>, <link ref="I_bib51">51</link>, <link ref="I_bib52">52</link>, <link ref="I_bib53">53</link>, <link ref="I_bib54">54</link>, <link ref="I_bib55">55</link>, <link ref="I_bib56">56</link>, <link ref="I_bib57">57</link>). In jüngster Zeit wurde unter anderem mit Hilfe dieser Technik mit der Kartierung von <em>Pseudomonas</em>-Stämmen begonnen (<link ref="I_bib58">58</link>). Eine andere, auf der Polymerase-Kerttenreaktion (PCR) basierende Methode, die Random Amplified Polymorphic DNA (RAPD)-Analyse, wurde ebenfalls für die zuverlässige Typisierung von <em>P. aeruginosa</em> herangezogen (<link ref="I_bib44">44</link>, <link ref="I_bib46">46</link>, <link ref="I_bib53">53</link>, <link ref="I_bib55">55</link>, <link ref="I_bib56">56</link>, <link ref="I_bib59">59</link>, <link ref="I_bib60">60</link>, <link ref="I_bib61">61</link>, <link ref="I_bib62">62</link>). Für diese Methode werden in der Literatur teilweise auch die Bezeichnungen Arbitrarily Primed Polymerase Chain Reaktion (AP-PCR), DNA Amplification Fingerprinting (DAF) oder PCR Fingerprinting verwendet.</p>
               <p>In den letzten Jahren wurden viele epidemiologische Untersuchungen bei CF-Patienten mit Hilfe molekulargenetischer Typisierungsmethoden durchgeführt. Im Focus standen hier vor allem Fragen nach Infektionsquelle bzw. Transmission von <em>P. aeruginosa </em>(<link ref="I_bib51">51</link>, <link ref="I_bib55">55</link>, <link ref="I_bib56">56</link>). Unklar blieb bisher jedoch, ob innerhalb der Atemwege desselben Individuums mehrere <em>Pseudomonas</em>-Stämme koexistieren, und ob Veränderungen auf der Ebene des bakteriellen Genoms für die Alteration des Phänotyps verantwortlich sind.</p>
            </subsection>
         </section>
         <section id="N102AD">
            <head>1.2 Aufgabenstellung</head>
            <p>
               <citenumber id="N102B4" start="4"/>Das Ziel dieser Arbeit war die Evaluierung von mikrobiologischen Proben aus Rachenabstrich und Sputum im Vergleich zur BAL von Patienten mit cystischer Fibrose und milder Lungenerkrankung in bezug auf Sensitivität, Spezifität und prädiktive Wertigkeit des Nachweises von <em>P. aeruginosa</em>. Hierzu wurden bei 38 an Mukoviszidose erkrankten Kindern und Jugendlichen zu zwei Untersuchungszeitpunkten im Abstand von 18 Monaten mikrobiologische Kulturen aus den Atemwegen entnommen und analysiert. Darüber hinaus wurde die Frage nach dem Auftreten von genetisch unterschiedlichen Isolaten in den Atemwegen desselben Individuums und die Beurteilung der genetischen Variabilität der <em>Pseudomonas</em>-Isolate in sequentiellen Probenentnahmen untersucht. Die Genotypisierung der <em>Pseudomonas</em>-Isolate erfolgte mittels Pulsfeld-Gelelektrophorese von RFLP-Fragmenten sowie mittels RAPD-Analyse des bakteriellen Genoms. Gleichzeitig wurden Diskriminationsfähigkeit und Reproduzierbarkeit beider Methoden verglichen und eine Empfehlung für die Typisierung von <em>P. aeruginosa</em>-Isolaten aus den Atemwegen von CF-Patienten formuliert.</p>
         </section>
      </chapter></cms:content></cms:document></cms:container>