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Autoklav |
Varioklav, Oberschleißheim |
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Blot-Apparatur (Semidry-Blot) |
LMS, Dossenheim |
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CO2-Inkubationsschrank |
Heraeus Christ, Zürich |
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Flureszensmikroskop |
Zeiss, Oberkochen |
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Gelelektrophorese-Apparatur |
AGS, Heidelberg |
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Minigelapparatur, Midget |
Pharmacia Biotech, Freiburg |
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PCR-Gerät, PTC-200 |
MJ Research; Waltham |
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Plattenphotometer, MRX |
Dynatech, Denkendorf |
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Sequenzier-Apparatur |
Pharmacia, Freiburg |
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Spektralphotometer |
Eppendorf, Hamburg |
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Szintillationsspektrometer, 1450 MicroBetaTrilux |
Wallac, Finnland |
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Umkehrmikroskop, Labovert |
Leica, Wetzlar |
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Videodokumentationsgerät |
Herolab, Wiesloch |
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Zellernter |
Wallac, Finnland |
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Dialysemembranen |
Serva, Heidelberg | |
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Einmal-Sterilfilter (0,2 µm), Gel-Blotting-Papier |
Schleicher & Schüll, Dassel | |
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ELISA-Platten, MaxiSorp |
Nunc, Wiesbaden | |
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Glasperlen (0,5 mm) |
Braun Biotech, Melsungen | |
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Nitrocellulosemembran (0,2 µm) |
Pharmacia Biotech, Freiburg | |
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Zellkultur- und Mikrotiterplatten |
Costar, Bodenheim | |
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Glasfaserfilter, Filtermat A; Szintillationswachs MeltiLex A |
Wallac, Finnland | |
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Dynabeads® Oligo (dT)25 |
Dynal, Norwegen | |
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Ni-NTA-Matrix |
Qiagen, Hilden |
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BCA-Proteinbestimmungs-Kit |
Pierce, USA |
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Dynabeads-mRNA-DIRECT-Kit |
Dynal, Norwegen |
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Geltrockner-Kit, pGEM-T-Vektorsystem, RT (M-MLV), Taq-Polymerase, DNase |
Promega, Heidelberg |
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Nucleobond-Maxi-Kit, Nucleospin-Plasmid-Kit, NucleoTrap-Gel-Extraktion-Kit |
BD Clontech, Heidelberg |
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PegGOLD-RNApure |
pegLab, Erlangen |
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Sequenase-Sequenzier-Kit |
Amersham, USA |
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SuperScript-cDNA-Synthesis-Kit (E. coli DNA Ligase, E. coli DNA Polymerase I, E. coli RNase H, RT-Superscript II, T4- Polynukleotidkinase, T4 DNA-Polymerase) |
Life Technologies |
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Lysozym |
Roth, Karlsruhe |
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Restriktionsenzyme, T4-DNA-Ligase |
NEB, Frankfurt |
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FuGENE |
Roche, Mannheim |
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"Weiße Leghorn" Hühner |
Versuchsstation Tierzucht, Blumberg |
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Eimeria tenella (Houghton-Stamm) |
Frau Dr. Giesela Greif, Abteilung Parasitologie, Bayer AG, Monheim |
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Hühnermonozytenzelllinie (HD11) |
Dr. Phi Van, BFA für Landwirtschaft, Zelle |
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Affennierenzelllinie (COS-7) |
S. Hartmann, im Haus |
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Escherichia coli XL1- Blue |
Stratagene,Heidelberg |
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pCDNA3 |
Invitrogen, Karlsruhe |
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pGEM-T |
Promega, USA |
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pQE30 |
Qiagen, Hilden |
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pQE30-Etmic1,-SO7,-TA4 |
Dr. T. Pogonka, im Haus |
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pSUC2T7M13ORI (pSUC2) |
Genetics Institute, USA |
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pVR1012 |
Vical, USA |
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Saccharomyces cereviciea YTK12 (suc2 - , trp -) |
Genetics Institute, USA |
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pCDNA3-chIL-18 |
K. Schneider, Institut für Medizin, Universität Freiburg |
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Allgemein
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Griess-Reagenz |
0,1 % (w/v) Naphthylethylen 1,0 % (w/v) Sulfanilamid in 2,5 % Phosphorsäure (H3PO4) |
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H2O |
deionisiertes Wasser (Millipore) mit einer Leitfähigkeit kleiner 15 mSi |
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PBS |
136,9 mM NaCl 2,7 mM KCl 8,1 mM Na2HPO4
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TE-Puffer |
1 mM EDTA 10 mM Tris-HCl, pH 7,4-8,0 |
Bakterienlösungen
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LB-Medium |
10 g/l Bacto-Trypton 5 g/l Hefeextrakt 10 g/l NaCl pH 7,0 |
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SOB-Medium |
20 g/l Trypton 5 g/l Hefeextrakt 0,5 g/l NaCl 2,5 ml/l 1 M KCl 0,2 ml/l 5 N NaOH |
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SOC-Medium |
SOB + 20 mM Glukose |
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Agar-Platten |
LB-Medium mit 1,5% Bacto-Agar |
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10x Hogness-Einfriermedium |
36 mM K2HPO4
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Na-Ampicillin |
50 mg/ml |
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Tetracyclin-HCl |
10 mg/ml in Ethanol |
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Kanamycin |
25 mg/ml |
Hefemedien
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Zellkulturmedien für eukaryotische Zellen
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RPMI 1640-Vollmedium (für PBL und Milzzellen) |
457,5 ml RPMI 1640 12,5 ml L-Glutamin (2,5%) 5 ml Penicillin/Streptomycin(100 U/ml und 100 µg/ml) 25 ml FCS (5%) (Hitze-inaktiviert) |
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Trypan-Blau-Lösung |
160 mg Trypan-Blau in 100 ml PBS |
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Iscove's Vollmedium (für HD11-Zellen) |
425 ml Iscove's MDM 50 ml FCS (Hitze-inaktiviert) 20 ml L-Glutamin 5 ml Penicillin/Streptomycin(100 U/ml und 100 µg/ml) |
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Dulbeccos-Vollmedium (für COS-7-Zellen) |
425 ml Dulbeccos-MDM 50 ml FCS (Hitze-inaktiviert) 20 ml L-Glutamin 5 ml Penicillin/Streptomycin(100 U/ml und 100 µg/ml) |
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Einfriermedium |
9 Teile Vollmedium 1 Teil DMSO |
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DEAE-Dextran-Transfektionsreagenz |
10 mg/ml DEAE-Detran, in PBS 2,5 mg/ml Chloroquine, in PBS |
Aufreinigung von E. tenella-Sporozoiten
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Aufreinigung von pQE-30-Expressionsprodukten
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Puffer A |
6 M Guanidiumhydrochlorid |
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Puffer B |
8 M Harnstoff 100 mM Na H2PO4 10 mM Tris-HCl, pH 8,0 |
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Puffer C |
wie Puffer B, pH 6,3 |
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Puffer E |
wie Puffer B, pH 4,0 |
Herstellung kompetenter Bakterien und Hefen
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Transformationspuffer (für E. coli) |
10 mM Pipes |
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Lithiumacetatlösung (für Hefe) |
1 Vol 10 x TE-Puffer, pH 7,5 1 Vol 10 x Lithiumacetat (1 M, pH 7,5) 8 Vol MilliQ-H2O |
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PEG-Lösung (für Hefe) |
1 Vol 10 x TE-Puffer, pH 7,5 1 Vol 10 x Lithiumacetat (1 M, pH 7,5) 8 Vol 50 % (w/v) PEG 4000 |
Plasmidisolation aus Bakterien und Hefen
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Lysepuffer I (für Hefe) |
1% Triton X-100 |
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Lysepuffer II (für Hefe) |
100 mM NaCl 1 mM EDTA 0,1 % SDS 10 mM Tris-HCl, pH 8,0 |
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STET-Puffer (für E. coli) |
8 % Sacharose 0,1 % Triton X-100 50 mM EDTA 50 mM Tris-HCl, pH 8,0 |
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CTAB-Lösung (für E. coli) |
10 % in H2O |
Agarosegelelektrophorese
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10 x TBE |
900 mM Tris-HCl 900 mM Borsäure 20 mM EDTA, pH 8,0 |
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10 x Ladepuffer |
25 % Ficoll 0,1 % Bromphenolblau 0,1 % Xylencyanol FF |
SDS-PAGE
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Acrylamidlösung (30%) |
30% Acrylamid (w/v) 0,8% Bisacrylamid (w/v) |
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Sammelgelpuffer |
1,0 M Tris-HCl, pH 6,8 |
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Trenngelpuffer |
1,5 M Tris-HCl, pH 8.8 |
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2 x Probenpuffer |
125 mM Tris-HCl, pH 6,8 4% SDS 20% Glyzerin 0,1% BPB 100 mM DDT |
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Elektrophoresepuffer |
250 mM Glycine 25 mM Tris-HCl, pH 8,3 0,1% SDS |
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Färbelösung |
0,1% Coomassie-Blau R-250 20 % Methanol 10 % Essigsäure |
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Entfärbelösung |
30% Ethanol 10% Essigsäure |
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Gebrauchslösung |
Trenngel 15% (10 ml) |
Sammelgel 5 % (2ml) |
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H2O |
2,3 ml |
1,4 ml |
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Acrylamidlösung |
5,0 ml |
0,33 ml |
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Sammelgelpuffer |
- |
0,25 ml |
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Trenngelpuffer |
1,3 ml |
- |
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10 % SDS |
0,1 ml |
20 µl |
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10 % APS |
0,1 ml |
20 µl |
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TEMED |
4 µl |
2 µl |
Immunblot
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ELISA
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Beschichtungspuffer (Puffer I) |
0,2 M Na-Carbonat, pH 9,4-9,7 (aus 0,2 M NaHCO3 und 0,2 M Na2CO3 ) 0,02 % NaN3 |
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ELISA-Puffer II |
0,1 % Tween 20 |
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ELISA-Puffer III |
Puffer I 1 mM MgCl2 |
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Waschpuffer |
0,9 % NaCl 0,1 % Tween 20 |
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PNPP-Substratlösung |
unmittelbar vor Messung 1 x Substrattablette Sigma 104-105 in 5 ml ELISA-Puffer III lösen. |
Kopplung von Peptiden an BSA
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BSA myc-Peptid Glutaraldehyd |
0,8 mg/ml 0,4 mg/ml 0,08 % in 0,1 M NaHCO3 |
Sequenzierung
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Polyacrylamid-Gel |
9 ml Acrylamidlösung (40 %) 25,2 g Harnstoff 3,6 ml 10 x TBE
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Puffer zur enzymatischen Modifizierung von DNA
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Datenbanken und Web-Services
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E. tenella-EST-Datenbank (Tigr) |
http://www.tigr.org/tigrscripts/tgi/T_index.cgi? species=e_tenella |
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Apikpmplexa-EST-Datenbank |
http://www.cbil.upenn.edu/apidots/ |
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E. tenella-Genom und EST-Datenbank (Sanger) |
http://www.sanger.ac.uk/Projects/E_tenella/ |
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blast-Service |
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/BLAST/ |
|
diverse Sequenzanalysen |
http://www.ebi.ac.uk/services/ |
|
blast-Surver für Parasiten-EST |
http://www.ebi.ac.uk/blast2/parasites.html |
|
SignalP (Nielsen et al. 1997) |
http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP/) |
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| DiML DTD Version 4.0 | Zertifizierter Dokumentenserver der Humboldt-Universität zu Berlin | HTML-Version erstellt am: 18.05.2005 |