| Beinert, Herrn Dr. med. Thomas : Untersuchungen zur oxidativen Lungenbelastung unter Radio-Chemotherapie bei Patienten mit fortgeschrittenem Bronchialkarzinom |
Aus der medizinischen Klinik und Poliklinik II
mit Schwerpunkt Onkologie und Hämatologie
der Medizinischen Fakultät Charité
der Humboldt-Universität zu Berlin
Zur Erlangung der Venia legendi
für das Fach
Innere Medizin
vorgelegt der Medizinischen Fakultät Charité
der Humboldt-Universität zu Berlin
Dekan: Prof. Dr. med. Dr. h. c. R. Felix
Gutachter:
Gutachter: Prof. Drings, Heidelberg
Datum der Promotion: 2.6.2000
Reaktive Sauerstoffspezies sind die entscheidenden Faktoren der pulmonalen Toxizität unter Radio-Chemotherapie. Sie induzieren eine akute pulmonale entzündliche Reaktion, unter der es zur Ausschüttung einer sich selbst verstärkenden Zytokinkaskade im Sinne eines
multifaktoriellen Zytokinnetzwerkes und in der Folge unter einer persistierenden Zytokinkaskade zur Generierung von sekundären reaktiven Sauerstoffspezies kommt.
Die Aktivierung dieser Zytokinkaskade ist noch Monate nach Chemotherapie oder Strahlentherapie auch bei Patienten, die klinisch keine Symptome der Lungenschädigung zeigen, nachweisbar. Dieser Prozeß kann, ähnlich wie bei der fibrosierenden Alveolitis, mit einer Fibrosierung des Lungengewebes und mit Ablagerung von extrazellulärer Matrix einhergehen.
Die vorliegende Arbeit hat durch die systematische Analyse an 261 Lavagen von 199 Bronchialkarzinom-Patienten vor, unter und nach zytoreduktiver Therapie die Determinanten des oxidativen pulmonalen Stress untersucht.
Als Meßparameter des akuten oxidativen Stress ist die Gesamtzellzahl in der BALF, der Methioninsulfoxidgehalt sowie die Konzentration von Glutathion, IL-1, IL-6 und IL-8, TNF-alpha, weiterhin die VEGF-Konzentration in der ELF geeignet. Erstmalig gezeigt werden konnte hierbei, daß VEGF nicht nur im Rahmen der Neoangiogenese, sondern auch durch reaktive Sauerstoffspezies hochreguliert wird und oxidativen Stress sensitiv anzeigt.
Bei manifester Lungenfibrosierung könnte P-III-P ein sensitiver Marker der Fibroblasten-aktivierung und der Produktion extrazellulärer Matrix sein. Die Untersuchungen ergaben zwischen den Folgen der Strahlentherapie und Chemotherapie lediglich quantitative, keine qualitativen Unterschiede.
Die vorliegende Arbeit möchte die Grundlage schaffen, dosisintensivierte multimodale Therapien bezüglich der oxidativen pulmonalen Belastungen bei Patienten mit Bronchialkarzinom invasiv zu monitoren. Dies könnte eine individuelle Dosisoptimierung durch die Bestimmung der oxidativen
pulmonalen Kapazität, insbesondere der Glutathionkonzentration in der ELF, schaffen.
Schlagwörter:
Schlagworte: Lunge, Krebs, Chemotherapie, Radiotherapie, oxidativer Stress
Induction of reactive oxygen is the main pathway of acute pulmonary injury
during radio-chemotherapy. This release of cytokines during inflammation
leads to a self perpetuating cytokine cascade as a cytokine network,
resulting in the generation of secondary oxidative stress.
This cytokine activation is detectable during therapy as well as months
after therapy, even if the patient is clinically asymptomatic. This
activated cytokine network can be accompanied by the deposition of
extracellular matrix (similar as in lung fibrosis).
In our study, we analysed 261 bronchoalveolar lavages (BAL) from 199
patients with lung carcinoma under, before and after chemotherapy and / or
radiotherapy.
The following BAL parameters indicating oxidative stress were found: total
cell count, concentration of methionine sulfoxide, gluthatione, IL-1,
IL-6, IL-8, TNF-alpha and VEGF. It was shown for the first time that VEGF
is also upregulated by oxidative stress. If lung fibrosis is manifest,
P-III-P could be a marker of activation of fibroblasts and of the
production of extracellular matrix. In general, differences found in
measured parameters during chemotherapy or radiotherapy were of
quantitative, not of qualitative nature.
Our study wants to lay the groundwork in monitoring pulmonary stress
invasively in lung cancer patients. This could lead to better individual
dose application by defining the antioxidative capacity, especially the
gluthatione concentration in the BAL.
Keywords:
keywords: lung, cancer, chemotherapy, radiotherapy, oxidative stress
Inhaltsverzeichnis | |
| Titelseite | Untersuchungen zur oxidativen Lungenbelastung unter Radio-Chemotherapie bei Patienten mit fortgeschrittenem Bronchialkarzinom |
| 1 | Einleitung |
| 1.1 | Epidemiologie des Bronchialkarzinoms |
| 1.2 | Therapie des Bronchialkarzinoms |
| 1.3 | Pulmonale Nebenwirkungen der zytoreduktiven Therapie |
| 1.4 | Reaktive Sauerstoffspezies (ROS) |
| 1.4.1 | Generierung von reaktiven Sauerstoffspezies |
| 1.5 | Die Lunge als Zielorgan oxidativer Schäden |
| 1.6 | Bisherige Untersuchungen an der BALF von Patienten mit soliden Tumoren |
| 2 | Hintergrund |
| 2.1 | Anatomische Vorbemerkungen |
| 2.1.1 | Die Lungenperipherie |
| 2.1.2 | Das Lungeninterstitium |
| 2.1.3 | Der interstitielle Raum |
| 2.1.4 | Die Basalmembran |
| 2.2 | Bronchoalveoläre Lavage (BAL) |
| 2.2.1 | Zelluläre Bestandteile der BAL |
| 2.2.1.1 | Monozyten/Alveolarmakrophagen |
| 2.2.1.2 | Neutrophile Granulozyten |
| 2.2.1.3 | Eosinophile Granulozyten |
| 2.2.1.4 | Lymphozyten |
| 2.2.2 | Nicht zelluläre Bestandteile der BAL |
| 2.2.2.1 | Tumor Necrosis Factor-alpha (TNF-alpha) |
| 2.2.2.2 | Interleukin 6 (IL-6) |
| 2.2.2.3 | Wachstumsfaktoren |
| 2.2.2.3.1 | Transforming Growth Factor (TGF-beta) |
| 2.2.2.3.2 | Plateled-derived growth factor (PDGF) |
| 2.2.2.3.3 | Vascular epithel growth factor (VEGF) |
| 2.3 | Fibroblasten |
| 2.3.1 | Fibroblastenaktivierung |
| 2.3.2 | Kollagenbildung als Folge der Fibroblastenaktivierung |
| 2.4 | Das intrapulmonale System der antioxidativen Abwehr |
| 2.4.1 | Antioxidative Enzymsysteme |
| 2.4.2 | Nicht-enzymatische Anitoxidantien |
| 2.4.3 | Das pulmonale Glutathionsystem |
| 2.4.4 | Methioninsulfoxid als Indikator intrapulmonaler ROS-Belastung |
| 2.5 | Hitzeschockproteine (HSP) |
| 2.6 | Reaktive Sauerstoffspezies unter zytoreduktiver Therapie |
| 2.6.1 | Chemotherapie |
| 2.6.1.1 | Bleomycin |
| 2.6.1.2 | Cyclophosphamid und Ifosfamid |
| 2.6.1.3 | Anthrazykline |
| 2.6.2 | Wirkmechanismen ROS-vermittelter Lungenschädigungen unter Chemotherapie |
| 2.6.3 | Strahlentherapie |
| 2.6.3.1 | Wirkmechanismus |
| 2.6.3.2 | Pulmonale Toxizität |
| 2.6.4 | Klinische Bilder pulmonaler Toxizität unter zytoreduktiver Therapie |
| 2.6.4.1 | Pneumonitis |
| 2.6.4.2 | Lungenfibrose |
| 3 | Fragestellung |
| 4 | Material und Methoden |
| 4.1 | Patientenkollektiv |
| 4.1.1 | Einteilung in die Therapiegruppen |
| 4.1.2 | Tumorhistologie |
| 4.1.3 | Aufteilung der Lavage-Proben auf die Patientengruppen |
| 4.1.4 | Remissionskriterien |
| 4.2 | Bronchoalveolären Lavage (BAL) |
| 4.2.1 | Prinzip der BAL |
| 4.2.2 | Durchführung der BAL |
| 4.2.3 | Aufbereitung der Proben |
| 4.2.4 | Zytologische Untersuchungen |
| 4.2.4.1 | Anfertigung der Zytozentrifugenpräparate |
| 4.2.4.1.1 | Zytologische Färbungen |
| 4.2.4.2 | Vitalitätsnachweis der Zellen |
| 4.2.4.3 | Immunophänotypisierung der BALF-Lymphozyten |
| 4.2.4.3.1 | Vorbereitung des Zell-Pallets zur FACS-Analyse |
| 4.2.4.3.2 | Aufbereitung von peripherem Blut für die FACS-Analyse |
| 4.2.4.4 | FACS-Analyse der intrazellulären Hitzeschockproteine |
| 4.2.4.5 | Zytokin-Nachweis mittels ELISA |
| 4.2.5 | Biochemische Untersuchungen der BALF |
| 4.2.5.1 | Bestimmung des Volumens der ELF |
| 4.2.5.1.1 | Prinzip der Harnstoffbestimmung |
| 4.2.5.1.2 | Testansatz |
| 4.2.5.2 | Gesamteiweiß |
| 4.2.5.3 | Albumin |
| 4.2.5.4 | Nachweis von Laminin in der BALF |
| 4.2.5.5 | N-terminales Prokollagen-III-Peptid (N-P-III-P) |
| 4.2.6 | Neoangiogene Faktoren und Wachstumsfaktoren |
| 4.2.7 | Methioninsulfoxid |
| 4.2.8 | Gesamtglutathion |
| 4.2.8.1 | Glutathiondisulfid / reduziertes Glutathion |
| 4.2.8.1.1 | HPLC (high performance liquid chromatography) |
| 4.3 | Statistik |
| 5 | Ergebnisse |
| 5.1 | Einteilung der Proben |
| 5.2 | Anthropometrische Daten |
| 5.2.1 | Altersverteilung |
| 5.2.2 | Geschlechtsverteilung und Tumorhistologie in den Patientengruppen |
| 5.2.3 | Chronische Bronchitis und Nikotinabusus |
| 5.3 | Zytologische Parameter der BALF |
| 5.3.1 | Vitalitätsprüfung der Zellen in der BALF |
| 5.3.2 | Gesamtzellzahl in der BALF |
| 5.3.3 | Durchflußzytometrische Zelldifferenzierung |
| 5.3.3.1 | Alveolarmakrophagen |
| 5.3.3.2 | Lymphozyten |
| 5.3.3.3 | Neutrophile Granulozyten |
| 5.3.3.4 | Eosinophile Granulozyten |
| 5.3.3.5 | Immunphänotypisierung der Lymphozytensubpopulationen |
| 5.3.3.5.1 | T-Helfer- und T-Suppressor.-Lymphozyten |
| 5.3.3.5.2 | Verhältnis von T-Helfer- und T-Supressorlymphozyten |
| 5.4 | Ergebnisse der biochemischen BALF-Untersuchungen |
| 5.4.1 | Quantifizierung der epithelialen Flüssigkeit (ELF) |
| 5.4.2 | Gesamtprotein und Albumin |
| 5.4.3 | Nachweis spezifischer Bindegewebsproteine |
| 5.4.3.1 | Prokollagen-III-Peptid (P-III-P) |
| 5.4.3.2 | Laminin-P1-Konzentrationen |
| 5.5 | Wachstumsfaktoren |
| 5.5.1 | Plateled derived growth factor (PDGF) |
| 5.5.2 | Basic fibroblast growth factor (bFGF) |
| 5.5.3 | Epidermal growth factor (EGF) |
| 5.5.4 | Transforming growth factor beta (TGF-beta) |
| 5.5.5 | Vascular epithel growth factor (VEGF) |
| 5.6 | Zytokine |
| 5.6.1 | Tumor Nekrose Faktor alpha (TNF-alpha) |
| 5.6.2 | Interleukin 1 (IL-1). |
| 5.6.3 | Interleukin 2 (IL-2) |
| 5.6.4 | Interleukin 6 (IL-6) |
| 5.6.5 | Interleukin 8 (IL-8) |
| 5.7 | Parameter des Oxidantien/Antioxidantien-Gleichgewichts |
| 5.7.1 | Methioninsulfoxidgehalt alveolärer Proteine als Indikator der pulmonalen oxidativen Belastung |
| 5.7.2 | Glutathion |
| 5.8 | Hitzeschockproteine (HSP) |
| 5.9 | Korrelationen zwischen den einzelnen Untersuchungsparametern |
| 6 | Diskussion |
| 6.1 | Zelluläre Bestandteile der BALF |
| 6.2 | Zytokine und Wachstumsfaktoren |
| 6.3 | Bindegewebsproteine |
| 6.4 | Hitzeschockproteine |
| 6.5 | Glutathionsystem und Methioninsulfoxidgehalt der alveolären Proteine |
| 6.6 | Patientenkollektiv |
| 7 | ROS-assoziierte pulmonale Krankheitsbilder |
| 8 | Therapieansätze zur Modulation des pulmonalen oxidativen Stress bei Lungenerkrankungen |
| 9 | Zusammenfassung |
| Abkürzungsverzeichnis | Verzeichnis der Abkürzungen |
| Bibliographie | Literaturverzeichnis |
| Danksagung | |
| Selbständigkeitserklärung | |
Tabellenverzeichnis | |
| Tabelle 1: | Symptome bei Erstdiagnose eines Bronchialkarzinoms bei 650 Patienten (Hopwood et Stephens,1995) |
| Tabelle 2: | Histomorphologische Klassifikation und relative Häufigkeit maligner epithelialer Lungentumore (Beinert et al.,1998) |
| Tabelle 3: | Intrapulmonale Mechanismen der Zellschädigung durch reaktive Sauerstoffspezies (ROS) |
| Tabelle 4: | Reaktive Sauerstoffspezies: |
| Tabelle 5: | Pulmonale Toxizität zytoreduktiver Pharmaka (nach Niedermeyer et al., 1996) |
| Tabelle 6: | Verwendete Chemotherapiekombinationen zur Behandlung des Bronchialkarzinoms |
| Tabelle 7: | Charakteristika der Patienten bezogen auf die Gruppen der analysierten Proben |
| Tabelle 8: | Die Altersverteilung in den einzelnen Gruppen, bezogen auf die Anzahl der Proben |
| Tabelle 9: | Ränge der Altersverteilung innerhalb der Patientengruppen |
| Tabelle 10: | Geschlechtsverteilung und die Tumorhistologie in den Therapiegruppen |
| Tabelle 11: | chronische Bronchitis in den Therapie-Subgruppen |
| Tabelle 12: | Verteilung des kumulative Nikotinabusus auf die Therapie-Subgruppen |
| Tabelle 13: | Recovery in ml in den Patientengruppen |
| Tabelle 14: | Prozentsatz von Alveolarmakrophagen, bei denen durchflußzytometrisch eine Expression des jeweiligen Hitzeschockproteins nachweisbar war |
| Tabelle 15: | Prozentsatz von Alveolarmakrophagen, bei denen durchflußzytometrisch eine Expression des jeweiligen Hitzeschockproteins nachweisbar war |
| Tabelle 16: | Korrelationskoeffizienten zwischen ELF- Parametern (Korrelationskoeffizient "r" nach Freadman, Signifikanzniveau ("p") darunter) |
Abbildungsverzeichnis | |
| Abb. 1: | kumulativer Nikotinabusus / chronische Bronchitis |
| Abb. 2: | Zellzahl (/100ml BALF) / Gruppen |
| Abb. 3: | Zellzahl (/ 100ml BALF) / Gruppe |
| Abb. 4: | Zellzahl (/ 100 ml BALF) / Raucher |
| Abb. 5: | Alveolarmakrophagen BALF (%) / Gruppe |
| Abb. 6: | Lymphozyten BALF (%) / Gruppe |
| Abb. 7: | Neutrophile Granulozyten BALF (%) / Gruppe |
| Abb. 8: | Eosinophile Granulozyten BALF (%) / Gruppe |
| Abb. 9: | Positive BALF-Zelle (%) / Gruppe |
| Abb. 10: | T4/T8 Lymphozyten / Gruppe |
| Abb. 11: | ELF(ml/100ml BALF) / Gruppe |
| Abb. 12: | Gesamtprotein (mg/ml ELF) / Gruppe |
| Abb. 13: | Albumin (mg/ml ELF) / Gruppe |
| Abb. 14: | Quotient Gesamtprotein/Albumin / Gruppe |
| Abb. 15: | P-III-P (U / ml ELF) / Gruppe |
| Abb. 16: | Laminin (ng/ml ELF) / Gruppe |
| Abb. 17: | PDGF (ng / ml ELF) / Gruppe |
| Abb. 18: | basic FGF (ng / ml ELF) / Gruppe |
| Abb. 19: | EGF (ng / ml ELF) / Gruppe |
| Abb. 20: | TGFv (ng / ml) / Gruppe |
| Abb. 21: | VEGF (ng / ml ELF) / Gruppe |
| Abb. 22: | TNFalpha (ng / ml ELF) / Gruppe |
| Abb. 23: | IL-1 (ng / ml ELF) / Gruppe |
| Abb. 24: | IL-2 (ng / ml ELF) / Gruppe |
| Abb. 25: | IL-6 (ng / ml ELF) / Gruppe |
| Abb. 26: | IL-8 (ng / ml ELF) / Gruppe |
| Abb. 27: | MET (0) [%] / Gruppe |
| Abb. 28: | Glutathion (10~6 M) / Gruppe |
| Abb. 29: | Verhältnis von reduziertem zu Gesamt-Glutathion / Gruppe |
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